Quelques mots sur la bioinfo

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1 Quelques mots sur la bioinfo
Maude Pupin

2 Déroulement des 6 séances de TP :
5 séances de TP + un examen de TP sur l'ensemble. Banques de données (aujourd'hui) Comparaison de séquences Prédiction de gènes Annotation des protéines Reconstruction phylogénétique Sujets de TP accessibles depuis :

3 Qu’est-ce que la bioinformatique ?
L’approche in silico de la biologie Un outil indispensable aux biologistes Un nouveau domaine de recherche Trois activités principales : Acquisition et organisation des données biologiques Conception de logiciels pour l’analyse, la comparaison et la modélisation des données Analyse des résultats produits par les logiciels

4 Les limites de la bioinformatique
Grands volumes de données à traiter Parfois diminution de la qualité des résultats au profit de la rapidité Recherche d’une solution parmi un ensemble infini de possibilités Besoin d’optimiser les programmes pour arriver à proposer un résultat dans un temps raisonnable Ce n’est pas toujours la solution la meilleure qui est trouvée Dépendant des connaissances biologiques Un résultat de programme n'est pas une vérité !

5 Quelques liens utiles (en français)
Deambulum à Infobiogen Recueil de liens vers des sites de biologie et bioinformatique Logiciels pour la biologie à l’Institut Pasteur De nombreux logiciels proposés et des liens vers des sites NPSA au PBIL (Pôle BioInformatique Lyonnais) L’étude des protéines et autres logiciels Proteomics tools à Expasy Tout sur l’étude des protéines

6 Présentation des banques de données

7 Qu’est-ce qu’une banque de données ?
Ensemble de données relatives à un domaine, organisées par traitement informatique, accessibles en ligne et à distance Souvent, les données sont stockées sous la forme d’un fichier texte formaté (respectant une disposition particulière) Besoin de développer des logiciels spécifiques pour interroger les données contenues dans ces banques

8 Les banques de données généralistes
Ces banques contiennent des données hétérogènes Collecte la plus exhaustive possible Banques de séquences nucléiques Banques de séquences protéiques Banques de structure 3D de macromolécules Banques d’articles scientifiques Avantage : tout est consultable en une fois Inconvénients : difficiles à maintenir, difficiles à interroger

9 Les banques de données spécialisées
Ces banques contiennent des données homogènes Collecte établie autour d’une thématique particulière Avantages : facilité pour mettre à jour les données, vérifier leur intégrité, offrir une interface adaptée, … Inconvénients : ne cible pas toujours ce que l’on veut; toutes les banques possibles n’existent pas Exemples : banques spécialisées pour un génome, banques de séquences d'immunologies, banques sur des séquences validées, …

10 Les banques de séquences nucléiques
Origine des données : Séquençage d’ADN et d’ARN Les données stockées : séquences + annotations Fragments de génomes Un ou plusieurs gènes, un bout de gène, séquence intergénique, … Génomes complets ARNm, ARNt, ARNr, … (fragments ou entiers) [ Note 1] : toutes les séquences (ADN ou ARN) sont écrites avec des T [ Note 2] : les séquences sont toujours orientées 5’ vers 3’.

11 Développement du séquençage de l’ADN
1977 : F. Sanger met au point la méthode de Sanger pour établir le séquençage de l’ADN. 1980 : Création de la banque EMBL 1984 : Développement de la réaction de polymérisation en chaîne (PCR) par Mullis. 1987 : Réalisation et commercialisation du 1er séquenceur automatisé par la société Applied Biosystems (Californie).

12 Banques nucléiques, les débuts
Apparition dans les années 1980 Toutes les séquences déterminées sont publiées dans un article Les banques guettent les articles et en extraient les séquences Croissance du nombre de séquences : Pas de publication systématique pour une séquence Beaucoup de données à collecter Gestion des données par des organismes spécialisés Les séquences et leurs annotations sont soumises aux banques par les laboratoires qui ont fait le séquençage

13 Banques nucléiques, le partage des données
Trois banques : EMBL (European Molecular Biology Laboratory), crée en 1982 GenBank (banque des Etats-Unis d’Amérique), crée en 1982 DDJ (DNA Databank of Japon), crée en 1986 Echange quotidien des données entre ces banques depuis 1987 (1992 ?) Répartition de la collecte des données Chaque banque collecte les données de son continent Même format de données pour la partie « Feature » Formats différents pour le reste de l’entrée

14 Banques nucléiques, mises à jour de la banque
Une nouvelle version est disponible plusieurs fois par an Date et numéro de version (release) Données figées à une date fixée (toutes les séquences collectées jusque là) Mise à disposition des « UpDates » Mise à jour quotidienne des données Toutes les nouvelles séquences depuis la dernière version Facilite le traitement des données Pas besoin de télécharger la banque entière tous les jours Possibilité de faire des calculs longs

15 Banques nucléiques, dernière version
EMBL, version 85 du 30 novembre 2005 64,739,883 entrées, 116,106,677,726 bp Dont 12,088,383 entrées (59,629,958,692 bp) sont issues de « shutgun » GenBank, version 150 de février 2006 54,584,635 entrées, 59,750,386,305 bp DDBJ, version 62 de mai 2005 entrées, bp

16 Banques nucléiques, croissance

17 Séquençage de génomes 1995 : Séquençage de la 1ère bactérie, Haemophilus influenzae (1,83 Mb) (Fleischmann). 1996 : Séquençage du 1er génome eucaryote, Saccharomyces cerevisiae (12 Mb) (Dujon). 1998 : Séquençage du 1er organisme pluricellulaire, Caenorhabditis elegans (100 Mb). 2001 : Annonce du décryptage presque complet du génome humain (février).

18 Les projets de séquençage (source : GOLD)
298 génomes complets publiés 236 bactéries 39 eucaryotes 23 archaebactéries 746 génomes procaryotes en cours de séquençage 706 bactéries 38 archaebactéries 531 génomes eucaryotes en cours de séquençage

19 Banques nucléiques, format d’une entrée
3 parties : Chaque ligne commence par un mot-clé Deux lettres pour EMBL Maximum 12 lettres pour Genbank et DDBJ Fin d’une entrée : // Description générale de la séquence « Features » Description des objets biologiques présents sur la séquence La séquence ctccggcagc ccgaggtcat cctgctagac tcagacctgg atgaacccat agacttgcgc tcggtcaaga gccgcagcga ggccggggag ccgcccagct ccctccaggt gaagcccgag acaccggcgt cggcggcggt ggcggtggcg gcggcagcgg cacccaccac gacggcggag

20 Description générale de la séquence
ID AF standard; genomic DNA; PRO; 948 BP. AC AF226511; SV AF DT 15-MAR-2000 (Rel. 63, Created) DT 04-JAN-2006 (Rel. 86, Last updated, Version 2) DE Neisseria meningitidis strain 1000 membrane protein GNA1220 (gna1220) gene, DE complete cds. OS Neisseria meningitidis OC Bacteria; Proteobacteria; Betaproteobacteria; Neisseriales; Neisseriaceae; OC Neisseria. RP RX DOI; /science RX PUBMED; RA Pizza M., Scarlato V., Masignani V., Giuliani M.M., Arico' B., … RT "Identification of vaccine candidates … " RL Science 287(5459): (2000). RL Submitted (19-JAN-2000) to the EMBL/GenBank/DDBJ databases. RL IRIS Immunobiological Research Institute in Siena, Chiron SpA, Via RL Fiorentina, 1, Siena 53100, Italy

21 Banques nucléiques, les différentes lignes (1/2)
ID : nom de l’entrée , … Unique (propre à une entrée) Non permanent (peut changer au cours des versions) AC : numéro d’accession Unique, plusieurs pour une même entrée (fusion d’entrées) Permanent (ne disparaît jamais de la banque) SV : version de la séquence (Acc.version) DT : date d’incorporation dans la banque et de dernière mise à jour DE : description du contenu de l’entrée

22 Banques nucléiques, la ligne ID
ID entryname dataclass; molecule; division; sequencelength BP. Exemple: ID AB standard; RNA; PRI; 368 BP. Entryname : nom de l’entrée en général numéro d'accession Dataclass : toujours le mot « standard » Molecule : type de la molécule de l’entrée DNA, RNA, circular DNA, … Division : essentiellement basé sur la taxonomie HUM (Human), MUS (Souris), MAM (Other Mammals), ... Taille : en paires de bases

23 Banques nucléiques, les différentes lignes (2/2)
KW : liste de mots-clés (désuet) OS : organisme d’où provient la séquence (nom latin) OC : taxonomie (ou « artificial sequence ») Exemple : Eukaryota; Planta; Phycophyta; Euglenophyceae. OG : localisation de séquences non nucléaires Exemple : Mito, Plasmid … RA, RT, RN, RC, RX, RP, RL : réf. bibliographiques DR : liaison avec d’autres banques de données FH, FT : caractéristiques d’une entrée (Features) SQ : séquence (termine par //)

24 Description des objets biologiques présents sur la séquence
« Features » Description des objets biologiques présents sur la séquence FH Key Location/Qualifiers FH FT source FT /db_xref="taxon:487" FT /mol_type="genomic DNA" FT /note="serogroup: B" FT /organism="Neisseria meningitidis" FT /strain="1000" FT gene FT /gene="gna1220" FT CDS FT /codon_start=1 FT /db_xref="GOA:Q9JPH5" FT /db_xref="InterPro:IPR001107" FT /db_xref="InterPro:IPR001972" FT /db_xref="UniProtKB/TrEMBL:Q9JPH5" FT /note="similar to stomatin-like proteins; Genome-derived FT Neisseria Antigen GNA1220" FT /transl_table=11 FT /product="membrane protein GNA1220" FT /protein_id="AAF " FT /translation="MEFFIILLVAVAVFGFKSFVVIPQQEVHVVERLGRFHRALTAGLN FT ILIPFIDRVAYRHSLKEIPLDVPSQVCITRDNTQLTVDGIIYFQVTDPKLASYGSSNYI FT MAITQLAQTTLRSVIGRMELDKTFEERDEINSTVVSALDEAAGAWGVKVLRYEIKDLVP FT PQEILRSMQAQITAEREKRARIAESEGRKIEQINLASGQREAEIQQSEGEAQAAVNASN FT AEKIARINRAKGEAESLRLVAEANAEAIRQIAAALQTQGGADAVNLKIAEQYVAAFNNL FT AKESNTLIMPANVADIGSLISAGMKIIDSSKTAK" XX

25 Banques nucléiques, Features
But : Mettre à disposition un vocabulaire étendu pour décrire les caractéristiques biologiques des séquences. Format : Key : indique un groupe fonctionnel Vocabulaire contrôlé, hiérarchique Location : instructions pour trouver l’objet sur la séquence de l’entrée Qualifiers : informations complémentaires /qualifier=‘‘commentaires libres’’

26 Banques nucléiques, Key (1/2)
Mot-clé le plus général : misc_feature Changements dans la séquence : misc_difference, ... Régions répétées : repeat_region, ... Régions des Ig : immunoglobulin_related, ... Structures secondaires : misc_structure stem_loop D-loop Régions impliquées dans la recombinaison : misc_recomb, ...

27 Banques nucléiques, Key (2/2)
gene misc_signal promoter CAAT_signal TATA_signal -35_signal -10_signal GC_signal RBS polyA_signal enhancer attenuator terminator misc_RNA prim_transcript precursor_RNA mRNA 5'clip 3'clip 5'UTR 3'UTR exon CDS intron polyA_site

28 Banques nucléiques, Location (1/2)
467 base seule séquence comprise entre les bornes (incluses) < commence avant le premier nt de l'entrée < début réel inconnu, avant 234 234..>888 finit après la position 888. ( )..888 position réelle inconnue, entre 228 et 234 145^146 situé entre deux nt adjacents

29 Banques nucléiques, Location (2/2)
complement( ) séquence complémentaire inversée de celle de l'entrée Intervalle toujours donné avec la borne la plus petite en premier Indique que l’objet est sur l’autre brin join(12..78, ) séquence unique composée des fragments indiqués concaténés Ex : ARNm mature constitué de plusieurs exons

30 Banques nucléiques, Qualifiers
Vocabulaire contrôlé entre « / » et « = » puis texte libre Le vocabulaire dépend du Key au quel le Qualifier se réfère Nom de gène /gene= ou /name= Fonction de la protéine codée par le gène /product= Origine de l’annotation /evidence= Texte libre /note=

31 Banques nucléiques, mise à jour des données
Evolution des entrées Erreurs de séquences Changements dans les annotations Pb : Seuls les auteurs d’une entrées peuvent la corriger ! Faible taux de mise à jour Création d’une nouvelle banque : TPA Third Party Annotation Stockage à part de la mise à jour des entrées

32 Banques nucléiques, inconvénients
Difficulté de mise à jour des données Version plus récente d’une séquence ou d’une annotation dans d’autres banques (ex : banques dédiées à un génome complet) Forte redondance Un même fragment de séquence présent dans plusieurs entrées Annotations peu normalisées Difficulté de recherche d’une information précise Annotations peu précises Peu de descriptions sur les gènes et leur produit Erreurs dans les annotations

33 Création de banques plus spécialisées, RefSeq
Gérée au NCBI Séquences nucléiques et protéiques Liens explicites entre les gènes et leurs produits Chaque entrée représente une unique molécule d’un organisme particulier Pas de redondance Mise à jour manuelle par le personnel du NCBI Validation des données et annotations normalisées Statut de l’entrée indiqué sur chaque entrée (prédit, validé, …) Information sur les variants de transcrits

34 Création de banques plus spécialisées, UniGene
Gérée au NCBI Regroupe les séquences nucléiques Comparaison des séquences de GenBank entre elles Création de groupes de séq similaires basés sur les gènes Une entrée : les séquences dérivées d’un même gène Les différents ARNm connus, les EST, … Informations sur le gène, la protéine, l’expression

35 Les banques de séquences protéiques
Origine des données Traduction de séquences d’ADN Séquençage de protéines Rare car long et coûteux Protéines dont la structure 3D est connue Les données stockées : séquences + annotations Protéines entières Fragments de protéines

36 Banques de séquences protéiques, les débuts
1965 : Atlas of Protein Sequences, Margaret Dayhoff 50 entrées Version papier jusqu’en 78, puis version électronique 1984 : création de PIR-NBRF (Protein Information Resource - National Biomedical Research Foundation) Collaboration avec MIPS (Allemagne) et JIPID (Japon) 1986 : création de SwissProt Collaboration entre SIB (Swiss Institute of Bioinformatics ) et EBI Fin 2003 : création de UniProt (Universal Protein Resource) Mise en commun des informations de PIR et SwissProt/TrEMBL « entrepôt » central de séquences et fonctions protéiques

37 PIR, ses deux bases de données
PSD : Protein Sequence Database Séquences protéiques avec annotation fonctionnelle «the most comprehensive and expertly annotated protein sequence database in the public domain » PIR-NREF : Non redondant protein sequences Pas plus d’une entrée pour une protéine (comparaison de toutes les séquences entre elles) Données : PIR-PSD, SwissProt, TrEMBL, RefSeq, GenPept, PDB

38 SwissProt, ses deux banques
Données corrigées et validées par des experts Haut niveau d’annotation Description de la fonction (références associées) Localisation des domaines fonctionnels Modifications post-traductionnelles Existence de variants, … Redondance minimale Nombreux liens vers d’autres banques (60 BD) TrEMBL Entrées supplémentaires à SwissProt (pas encore annotées) Traduction automatique de l’EMBL

39 SwissProt/TrEMBL, croissance

40 SwissProt/TrEMBL, format d’une entrée
Format basé sur celui de l’EMBL Mot-clé de 2 lettres au début de chaque ligne Les mêmes mots-clés sont utilisés Format différent pour les Features Mots-clés supplémentaires : GN : les différents noms du gène qui code pour la protéine (OR) les différents gènes qui codent pour la même protéine (AND) OX : références croisées vers les banques taxonomiques CC : commentaires, lignes très documentées dans SwissProt KW : mots-clés issus d’un distionnaire

41 SwissProt/TrEMBL, lignes CC
Informations découpées en blocs pour plus de lisibilité CC -!- TOPIC: First line of a comment block; CC second and subsequent lines of a comment block. De nombreux sujets sont abordés FUNCTION : description générale de la fonction de la protéine CATALYTIC ACTIVITY : description des réactions catalysées par les enzymes DEVELOPMENTAL STAGE : description du stade spécifique auquel la protéine est exprimée SUBUNIT : complexes dont fait partie la protéine (+ partenaires) …

42 SwissProt/TrEMBL, lignes FT
Régions ou sites d’intérêt dans la séquence Modifications post-traductionnelles Sites de fixation Sites actifs d’enzymes Structures secondaire Changements de séquence (y compris les variants) Format en colonne (nb caractères) 1-2 : FT 6-13 : Key (mot-clé, vocabulaire contrôlé) : début et fin de l’objet 35-75 : description (éventuellement sur plusieurs lignes)

43 UniProt, les différentes banques
UniProt : UniProt Knowledgebase Deux parties : entrées annotées manuellement (SwissProt) et entrées annotées de façon automatique (TrEMBL) Plus d’informations que dans les banques d’origine UniRef : UniProt Non-redundant Reference database UniRef100 : regroupement des séquences identiques et de leurs fragments provenant d’un même organisme UniRef90 : entrées de UniRef100 avec plus de 90% d’identité UniRef50 : idem pour 50% d’identitié UniParc : UniProt Archive UniProt + d’autres banques (PDB, RefSeq, FlyBase, brevets, …)

44 Banques protéiques, dernières versions
PIR-PSD : n° 80, 31/12/05, entrées PIR-NREF : n° 1.77, 19/09/05, entrées. PIR ( entrées) GenPept ( entrées) RefSeq : entrées PDB : entrées SwissProt : n° 48, 13/09/05, entrées TrEMBL : n° 31, 13/09/05: entrées UniProt : n° 6.0, 13/09/05: entrées UniRef100 : , UniRef90 : , UniRef50 : UniParc :

45 Une Banque bibliographique, PubMed
Contient Journaux concernant la biologie et la médecine Articles indexés par des experts à l’aide des termes MeSH Termes MeSH : vocabulaire contrôlé de termes biomédicaux et de molécules chimiques Hiérarchisé Dictionnaire de synonymes termes médicaux, termes chimiques Subheadings : sous-titres qui décrivent un aspect particulier des termes MeSH Mis à jour régulièrement

46 Exemple de terme MeSH

47 Systèmes d’interrogation de banques de données

48 Interrogation d’une banque
But : Obtenir des informations nouvelles et pertinentes Aide à la mise au point d’expériences Validation des résultats d’une expérience Contraintes pour un systèmes d’interrogation Obtention de données pertinentes (pas trop de résultats, mais tous ceux relatifs à notre problématique) Simplicité d’utilisation (syntaxe d’interrogation intuitive) Réponse rapide Possibilité d’analyse des résultats (couplage à des outils)

49 Entrez, le système d’interrogation du NCBI
Interface propriétaire (ne peut être installée par autrui) Opérateurs en majuscule AND, OR, NOT Nom du champ entre crochets homo sapiens [organism] Aide dans « Preview/Index » Historique (lien « History ») Ajout de limites (lien « Limits ») Sauvegarde, format Boutons « Display », « send to » Menus déroulants associés

50 Entrez, liens entre banques et entrées
PubMed termes MeSH communs OMIM Nucleotide Accès aux liens entre banques à l’aide du menu associé au bouton « Display » Liens entre banques Structure Similarité (BLAST) Protein Genome Taxonomy

51 SRS, le système d’interrogation de l’EBI (TIGR)
Système libre, de nombreux miroirs existent Onglet « Libary » Choix de la ou des banques interrogées Onglet « Query » Lancement du formulaire Onglet « Results » Historique des requêtes Onglet « Views » Création de format d’affichage

52 Interrogation via SRS Opérateurs
& (et), | (ou), ! (non) Nom des champ dans des menus déroulants Sauvegarde, format Bouton « Save » Bouton « Rerun query » Options associées Analyse bioinformatique des entrées Bouton « Launch »

53 SRS, le découpage en sous-entrées
Sous-entrée : partie extraite d’une entrée Annotation et séquence associée (fragment séquence parent) Utile dans le cas de champs répétés dans une entrée EMBL : références, « features », compteurs UniProt : ref, commentaires, liens, « features », compteurs Interrogeables facilement via le formulaire étendu Liste de valeurs quand vocabulaire contrôlé Sous-entrées « compteurs » Nombre d’apparitions de certains champs dans les entrées Non disponible dans Entrez

54 SRS, liens entre banques
Construits à partir des informations présentent dans les entrées Les liens sont bidirectionnels Les liens sont propagés : A lié à B et B lié à C alors A lié à C Deux types de liens Dans une entrée sous la forme d’hyperliens (HTML) Par requête à l’aide du bouton « Link », à partir d’une liste d’entrées. Pas de liens entre entrées d’une même banque

55 Quelques formats de données biologiques
Format des banques, exemples : Séquences ADN/ARN : EMBL ; GenBank et DDBJ Séquences protéiques : SwissProt et TrEMBL ; PIR ; … Formats lus par la plupart des outils en bioinformatique FASTA Séquence brute (« raw sequence ») Conversion de formats Lors de la consultation des banques Le programme ReadSeq (n’importe quel format en entrée, choix du format de sortie)

56 Le format FASTA ( et Multi-FASTA)
Une ligne de commentaires précédé de « > » La séquence brute (pas d’espace, ni de nombre) >Human Polycomb 2 homolog (hPc2) mRNA, partial cds ctccggcagcccgaggtcatcctgctagactcagacctggatgaacccat agacttgcgctcggtcaagagccgcagcgaggccggggagccgcccagct ccctccaggtgaagcccgagacaccggcgtcggcggcggtggcggtggcg gcggcagcggcacccaccacgacggcggagaagcctccagccgaggccca ggacgaacctgcagagtcgctgagcgagttcaagcccttctttgggaata taattatcaccgacgtcaccgcgaactgcctcaccgttactttcaaggag tacgtgacggtg