La présentation est en train de télécharger. S'il vous plaît, attendez

La présentation est en train de télécharger. S'il vous plaît, attendez

Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Autoassemblage de macromolécules biologiques via des poly(pyrroles) et/ou.

Présentations similaires


Présentation au sujet: "Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Autoassemblage de macromolécules biologiques via des poly(pyrroles) et/ou."— Transcription de la présentation:

1 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Autoassemblage de macromolécules biologiques via des poly(pyrroles) et/ou des nanotubes de carbone fonctionnalisés. Thèse de doctorat Jessica BAUR

2 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Sommaire Introduction Le poly(pyrrole-NTA) : une plateforme polyvalente pour limmobilisation de biomolécules Les nanotubes de carbone et leur incorporation dans les architectures biomoléculaires Conclusions et perspectives Remerciements 1

3 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Introduction générale Les biocapteurs SIGNAL Récepteur biologique Analytes Transducteur Electrochimique Gravimétrique Optique Oligo-sonde / oligo-cible Anticorps / antigène Substrat / enzyme … Film Thermique… Applications : sciences de la vie (agroalimentaire, médecine…), environnement (pollution), bioterrorisme Etape déterminante : immobilisation du biorécepteur sur le transducteur poly(pyrroles) électrogénérés = versatilité, stabilité, conduction, adressage électrochimique Challenges : augmenter les performances (sensibilité, spécificité, stabilité…) et diminuer la taille architectures tridimensionnelles à base de nanotubes de carbone 2

4 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Introduction générale Les polymères électrogénérés adsorption S P SP SP SP greffage chimique S P S P S P S P électropolymérisation S P S P S P S P adsorptiongreffage chimiqueélectropolymérisation bonne accessibilité du site actif moyennonmoyen stabilité nonoui taux dimmobilisation faiblemoyenfort dénaturation possible des biomolécules nonpossible rapidité de mise en œuvre ouinon 3

5 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Introduction générale Les polymères électrogénérés S P SP SP encapsulation ancrage par interactions affines S P S P S P S P systèmes affins les + utilisés : avidine/biotine adamantane/ -cyclodextrine NTA/Cu 2+ /histidine encapsulationinteractions affines bonne accessibilité du site actif moyenoui stabilité oui taux dimmobilisation fortmoyen dénaturation possible des biomolécules possiblenon rapidité de mise en œuvre oui 4

6 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Structure : feuillet de graphène enroulé « sans couture ». Les deux types de CNTs : Single-Walled Carbon Nanotubes SWCNTs 200 nm Multi-Walled Carbon Nanotubes MWCNTs 200 nm Introduction générale Les nanotubes de carbone (CNTs) : présentation 5

7 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Propriétés : Conductivités thermique et électrique, résistance mécanique, légèreté. avantage pour les biocapteurs ou les biopiles : haute surface spécifique (1000 m 2.g -1 ) Inconvénients : purification difficile et/ou coûteuse (carbone amorphe, graphite, particules de catalyseur…) solubilisation : mise au point dun pré-traitement [1] sans prétraitement, SWCNTs dans le THFavec prétraitement, SWCNTs dans le THF [1] R. Haddad et al. Analyst 2009, 134, Introduction générale Les nanotubes de carbone (CNTs) : présentation 6

8 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Quelques méthodes : Fonctionnalisation des défauts Fonctionnalisation non-covalente CNTs Fonctionnalisation covalente électropolymérisation Techniques utilisées : - fonctionnalisation non-covalente par -stacking pour limmobilisation de la GOX - combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour lencapsulation dune hydrogénase NiFe Introduction générale Les nanotubes de carbone (CNTs) : fonctionnalisation 7

9 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Sommaire Introduction Le poly(pyrrole-NTA) : une plateforme polyvalente pour limmobilisation de biomolécules Présentation du poly(pyrrole-NTA) et généralités Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Mise en évidence dune nouvelle interaction Les nanotubes de carbone et leur incorporation dans les architectures biomoléculaires Conclusions et perspectives Remerciements 8

10 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Le pyrrole-NTA : généralités Structure [2] acide nitrilotriacétique = NTA [2] N. Haddour et al. J. Am. Chem. Soc. 2005, 127, Biomolécules marquées avec des histidines immobilisées : lADN du VIH capteur à ADN pour la détection du VIH la glucose oxydase (enzyme modèle) biocapteur enzymatique pour la détection du glucose Linteraction NTA/Cu 2+ /histidine 9

11 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Signal irréversible du motif pyrrole Formation du (poly)pyrrole : augmentation du signal électroactif réversible du poly(pyrrole) Le pyrrole-NTA : généralités Etude électrochimique polymérisation du pyrrole-NTA incubation avec Cu 2+ (10 -2 mol.L -1, 20 min) incubation avec biomolécule marquée avec des histidines (0,5 mg.mL -1 ; 30 min) Etapes pour limmobilisation de biomolécules histidinylées électrode GOX 10 [pyrrole-NTA] = mol.L -1, CH 3 CN + LiClO 4 (0,1 mol.L -1 ), électrode Pt (Ø = 5 mm), v = 100 mV.s -1

12 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques capteur à ADN complet électrode nue électrode recouverte de Ppyr-NTA après ancrage de His-ADN sonde sur le Ppyr-NTA Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Caractérisation qualitative de linteraction NTA/Cu 2+ /His-ADN sonde clichés de microscopie à fluorescence obtenus après incubation avec avidine-FITC et rinçage, 11 séquence His-ADN sonde : 5-NH 2 -(His) 5 -GAGACCATCAATGAGGAAGCTG-3 électrode FITC électrode

13 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Caractérisation quantitative de linteraction NTA/Cu 2+ /His-ADN sonde /ADN cible microbalance à quartz (QCM), quartz dor modifiés par le poly(pyrrole-NTA)/Cu 2+. Equation de Sauerbrey : (a) His-ADN sonde, (b) B-ADN cible et (c) avidine Composé F (Hz) m (ng)n (mol) nombre de brins His-ADN sonde 71263, B-ADN cible 44161, avidine , recouvrement surface avec His-ADN sonde : 94 % pourcentage dhybridation : 45 % angle surface-duplex dADN : 80 ° 12 solutions dans le PBS (0,05 mol.L -1, pH = 7, NaCl 0,5 mol.L -1 ) ; débit : 50 µL.min -1 (a) : 0,01 mg.mL -1, (b) : 0,01 mg.mL -1 et (c) : 0,5 mg.mL -1

14 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques choix de la sonde électrochimique : 1) Fe(CN) 6 3/4- ( mol.L -1 ), E app = OCP / ECS et E = 5 mV rms. Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Etude du capteur à ADN par spectroscopie dimpédance électrochimique (EIS) avantages : décomposition du processus électrochimique global en processus élémentaires et cible non marquée résistance trop importante : utiliser une sonde neutre 13 principe de la spectroscopie dimpédance électrochimique : 2 E 2 I EcEc IcIc I E représentation utilisée : plan complexe de Nyquist 2) hydroquinone (10 -3 mol.L -1 ), E app = 0,4 V / ECS et E = 5 mV rms. gamme de fréquences : 0,1 Hz à 500 kHz. Circuit électrique équivalent modèle W R TC R el C DC ZWZW R el R TC R Re(Z) ( ) - Im(Z) ( ) f°f°

15 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Ancrage de His-ADN sonde sur le Ppyr-NTA : Détection du phénomène dhybridation de lADN : J. Baur et al. Anal. Chem. 2010, 82, Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Etude du capteur à ADN par spectroscopie dimpédance électrochimique [hydroquinone] = mol.L -1, E app = 0,4 V / ECS, E = 5 mV rms, électrode CV (Ø = 3 mm) et gamme de fréquences : 0,1 Hz à 500 kHz. Ppyr-NTA Solutions contenant mol.L -1 dADN complémentaire ou non-complémentaire demi-cercle R TC R TC plus importante avec lADN complémentaire Ppyr-NTA 14

16 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques courbe détalonnage : R TC = f([ADN cible ]). gamme de linéarité : à mol.L -1 pente = 89,8.unité log -1 limite de détection : mol.L -1 Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Etude du capteur à ADN par spectroscopie dimpédance électrochimique détermination de la limite de détection du capteur à ADN [hydroquinone] = mol.L -1, E app = 0,4 V / ECS, E = 5 mV rms, électrode CV (Ø = 3 mm) et gamme de fréquences : 0,1 Hz à 500 kHz. [ADN cible ] croissantes entre (a) et (f) 3, mol.L -1 R TC augmente avec [ADN cible ] J. Baur et al. Anal. Chem. 2010, 82,

17 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Elaboration dun capteur à ADN pour la détection du VIH Etude du capteur à ADN par conductimétrie courbe détalonnage pour f = 3 Hz [hydroquinone] = mol.L -1, E app = 0,4 V / ECS, E = 5 mV rms, électrode CV (Ø = 3 mm) et gamme de fréquences : 0,1 Hz à 500 kHz. courbe détalonnage : Z 3Hz = f([ADN cible ]). gamme de linéarité : à mol.L -1 pente = 82,8.unité log -1 limite de détection : mol.L -1 Z 3Hz augmente avec [ADN cible ] 16 J. Baur et al. Anal. Chem. 2010, 82,

18 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Interaction NTA/Cu 2+ /histidine performante pour limmobilisation de lADN Soupçons dinteraction entre le polymère et la biotine Mise en évidence dune nouvelle interaction entre NTA/Cu 2+ et la molécule biotine 17 NTA/Cu 2+ /(histidine) 2 NTA/Cu 2+ /(biotine) 2 [2] R. Griesser et al. Biochemistry 1970, 9, interaction entre latome S de la biotine et lion Cu 2+ démontrée en 1970 [2] Démonstration qualitative de cette nouvelle interaction par microscopie à fluorescence : cliché obtenus après incubations avec GOX-B et lavidine-FITC puis rinçage, Rappel : pas dancrage de lavidine-FITC sur les électrodes ni sur le Ppyr-NTA/Cu 2+ GOX électrode FITC

19 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Ppyr-NTA Ancrage de B-ADN sonde sur le Ppyr-NTA : Détection du phénomène dhybridation de lADN : Phénomènes dancrage et dhybridation confirmés Comparaison des deux systèmes délicate (interaction et ADN différents) Utilisation denzyme (GOX) pour comparaison J. Baur et al. Electrochem. Commun. 2010, 12, Mise en évidence dune nouvelle interaction NTA/Cu 2+ /biotine Etude de lancrage de lADN par spectroscopie dimpédance électrochimique : 18 [hydroquinone] = mol.L -1, E app = 0,4 V / ECS, E = 5 mV rms, électrode CV (Ø = 3 mm) et gamme de fréquences : 0,1 Hz à 500 kHz.

20 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Courbes typiques cinétique enzymatique : I = f([glucose]) aux faibles [glucose] : partie linéaire initiale = sensibilité de lélectrode aux fortes [glucose] : plateau = J max, saturation de lenzyme en substrat. Comparaison des résultats obtenus pour limmobilisation de la glucose oxydase (enzyme modèle) 19 E app = 0,6 V / ECS, tampon phosphate (0,1 mol.L -1, pH = 7). GOX électrode GOX électrode GOX

21 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Perméabilités : poly(pyrrole-NTA) : P m = cm.s -1 et poly(pyrrole-biotine) : P m = cm.s -1 (facteur 100) Performances similaires entre les systèmes NTA/Cu 2+ /histidine et NTA/Cu 2+ /biotine Meilleures performances en présence du duplex dADN + denzymes immobilisées (ADN agit comme un éventail) Comparaison des résultats obtenus pour limmobilisation de la glucose oxydase (enzyme modèle) Système Ppy-NTA/Cu 2+ / His-GOX Ppy-NTA/Cu 2+ / B-GOX Ppy-NTA/Cu 2+ /ADN duplex / avidine/B-GOX Ppy-biotine/ avidine/B-GOX [3] J max (µA.cm -2 )11,513,221,81 J max relatif100 %80 %130 %10 % sensibilité (mA.mol -1.L.cm -2 ) 0,50,60,90,15 sensibilité relative100 %80 %125 %40 % activité enzymatique en solution (U.mg -1 ) [3] S. Cosnier et al. Anal. Chem. 1999, 71, référence 20

22 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Avantages du poly(pyrrole-NTA) : bonne perméabilité du polymère et faible limite de détection possibilité dimmobiliser des molécules marquées avec des histidines OU des biotines adressage électrochimique propre aux polymères électrogénérés Avantages de linteraction NTA/Cu 2+ /histidine : réversibilité de linteraction NTA/Cu 2+ /histidine Avantages du nouveau système NTA/Cu 2+ /biotine : par rapport au système NTA/Cu 2+ /histidine : disponibilité commerciale des molécules biotinylées par rapport au système classique avidine/biotine : meilleures performances alternative séduisante au système avidine/biotine Conclusions 1 ère partie : le poly(pyrrole-NTA) 21

23 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Sommaire Introduction Le poly(pyrrole-NTA) : une plateforme polyvalente pour limmobilisation de biomolécules Les nanotubes de carbone et leur incorporation dans les architectures biomoléculaires Fonctionnalisation multiple de CNTs Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion dune réductase Conclusions et perspectives Remerciements 22

24 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Linteraction CNT/pyrène : Synthèse de pyrènes fonctionnalisés par des partenaires affins : Fonctionnalisation multiple des CNTs pour limmobilisation denzymes (GOX) 23 dépôt SWCNTs dispersés 20µL à 0,1 mg.mL -1 dans le THF séchage électrode répétition x2 Procédure : trempage de lélectrode dans une solution contenant un ou des pyrènes fonctionnalisés mol.L -1 dans le THF

25 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Fonctionnalisation simple des SWCNTs Système NTA/Cu 2+ /histidine Système adamantane/ -cyclodextrine 24 Système biotine/avidine/biotine solutions contenant un des 3 pyrènes ( mol.L -1 ) E app = 0,6 V / ECS, tampon phosphate (0,1 mol.L -1, pH = 7). électrode GOX électrode GOX

26 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Système Pyrène-NTA/ Cu 2+ /His-GOX Pyrène-adamantane/ -CD-GOX Pyrène-biotine/ avidine/B-GOX J max (µA.cm -2 )44,8 (51 %)135,4 (100 %)5,1 (4 %) sensibilité (mA.mol -1.L.cm -2 ) 2,38 (45 %)8,20 (100 %)0,11 (1 %) seuil de détection (mol.L -1 ) , , gamme de linéarité (mol.L -1 ) – 6, , – 9, , – 1, activité de lenzyme en solution (U.mg -1 ) référence Comparaison des résultats obtenus pour la fonctionnalisation simple des SWCNTs Système adamantane/ -cyclodextrine le plus performant Gammes de linéarité et seuil de détection similaires entre les systèmes adamantane/ -cyclodextrine et NTA/Cu 2+ /histidine Plus mauvais : avidine/biotine phénomène décrantage dû à lavidine 25

27 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Fonctionnalisation multiple des SWCNTs 26 mélange équimolaire 1/1/1 des 3 pyrènes ( mol.L -1 ) E app = 0,6 V / ECS, tampon phosphate (0,1 mol.L -1, pH = 7). GOX avidine -CD-GOX GOX Cu 2+ His-GOX GOX B-GOX

28 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Fonctionnalisation multiple des SWCNTs Résultats : Démonstration possibilité de fonctionnaliser les SWCNTs avec les 3 systèmes affins considérés (NTA/Cu 2+ /His, avidine/biotine, adamantane/ -CD) par simple trempage. Applications : détection multienzymatique à activités combinées, détection de plusieurs analytes… Enzyme -CD-GOX B-GOXHis-GOX J max (µA.cm -2 )5,38,413,5 sensibilité (mA.mol -1.L.cm -2 ) 0,300,530,59 seuil de détection (mol.L -1 ) 3, gamme de linéarité (mol.L -1 ) 3, – 6, , – 1, activité de lenzyme en solution (U.mg -1 )

29 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques 3 clusters FeS site actif NiFe Lhydrogènase NiFe de Desulfovibrio fructosovorans pour la bioconversion de lénergie : Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase Enzyme qui catalyse de façon réversible : H 2 = 2 H + + 2e - capacité double : - transformer H 2 en énergie électrique - stocker H 2 Mode de fonctionnement pour loxydation de H 2 (transfert délectrons indirect) : électrode H2H2 2 H + H 2 ase oxydée H 2 ase reduite MV 2+ MV ·+ e-e- 28 Combinaison performances CNTs et poly(pyrrole) H 2 ase électrode de carbone vitreux H 2 ase hydrogénase = viologène = CNTs =

30 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques dépôt CNTs : n x 10µL à 0,1 mg.mL -1 dans le THF mélange H 2 ase (0,2 mg.mL -1 ) + pyrrole-MV ( mol.L -1 ) : 10 µL polymérisation : E app = 0,8 V / ECS, H 2 O + LiClO 4 (0,1 mol.L -1 ). Polymère choisi : le poly(pyrrole-viologène) viologène = médiateur pour le transfert électronique entre lenzyme et lélectrode structure [4] : viologène = MV 2+ (médiateur rédox) dépôt mélange H 2 ase + monomère électro- polymérisation 29 [4] S. Cosnier et al. J. Electroanal. Chem. 1997, 433, Immobilisation par encapsulation dans le film de poly(pyrrole-viologène) sur des dépôts de CNTs : Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase dépôt SWCNTs dispersés séchage électrode répétition (n fois) électrode séchage H 2 ase électrode

31 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Etude sur électrode de carbone vitreux : MWCNTs Meilleures performances avec les MWCNTs 30 H 2 ase électrode H 2 ase hydrogénase = viologène = CNTs = Etude sur électrodes de carbone vitreux modifiées par les CNTs : J cat = 17 µA.cm -2 SWCNTs J cat = 103 µA.cm -2 électrode de carbone vitreux J cat = 301 µA.cm -2 quantités denzyme et de monomère constantes, dégazage Ar 30 min, H 2 30 min puis activation H 2 ase : E app = - 0,8 V / ECS (15 min) dans le tampon phosphate (0,1 mol.L -1, pH = 7) et étude dans la même solution par CV et enfin Ar 15 min puis CV. Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase H 2 ase électrode

32 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Caractérisation par microscopie électronique à balayage (MEB) : MWCNTs avant polymérisation après polymérisation Surface « lissée » avec les SWCNTs Conservation de la porosité avec les MWCNTs meilleures performances nm SWCNTs 200 nm Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase

33 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Evolution de lintensité catalytique en fonction de la quantité de MWCNTs : Probablement dû à : augmentation de la surface spécifique des électrodes due aux MWCNTs, meilleure perméabilité, transfert délectrons facilité du fait dune meilleure conduction… 32 Partie linéaire quantités denzyme et de monomère constantes, seul V MWCNTs change partie anodique des courbes de voltampérométrie cyclique courbe J cat = f(quantité MWCNTs) linéaire entre 10 et 50 µL de MWCNTs déposés Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase

34 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Fonctionnalisation multiple de SWCNTs : mise en œuvre simple par trempage possibilité de fonctionnalisation avec 3 systèmes affins différents Combinaison CNTs/poly(pyrrole) pour la connexion électrique dune hydrogénase résultats préliminaires mais prometteurs augmentation du signal obtenu après dépôt de CNTs en général et plus particulièrement avec les MWCNTs Nanotubes de carbone : augmentation de la surface spécifique des électrodes augmentation de la conduction et de la perméabilité des films Conclusions 2 ème partie : les nanotubes de carbone 33

35 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques CONCLUSIONS GENERALES Potentiel des films de poly(pyrrole) et des nanotubes de carbone pour : augmenter sensibilité et seuil de détection des architectures biomoléculaires immobilisation de biomolécules en général réaliser systèmes multifonctionnels combinaison des deux : amplification des performances PERSPECTIVES Poly(pyrrole-NTA) : NTA/Cu 2+ /biotine réversibilité, utiliser dans des biocapteurs (Ab/Ag, ADN…), taux de recouvrement de surface. CNTs : architecture multifonctionnelle : applications diverses, connexion dune hydrogénase NiFe : optimisation du système. 34

36 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Remerciements Jury : Rapporteurs : Dr. Elisabeth Lojou et Pr. Alexander Kuhn Examinateurs : Dr. Gérard Bidan et Pr. Pierre Gros Département de Chimie Moléculaire Equipe BEA : Directeurs de thèse : Dr. Serge Cosnier et Dr. Michael Holzinger, Dr. Chantal Gondran, Arielle Le Pellec, Dr. Alan Le Goff, Dr. Karine Gorgy Permanents et étudiants du DCM 35 Merci pour votre attention!

37 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques

38 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Système Pyrène-NTA/ Cu 2+ /His-GOX Pyrène-adamantane/ -CD-GOX Pyrène-biotine/ avidine/B-GOX temps de réponse (s) J max (µA.cm -2 )44,8 (51 %)135,4 (100 %)5,1 (4 %) sensibilité (mA.mol -1.L.cm -2 ) 2,38 (45 %)8,20 (100 %)0,11 (1 %) seuil de détection (mol.L -1 ) , , gamme de linéarité (mol.L -1 ) – 6, , – 9, , – 1, K M apparent (mol.L -1 ) 11, , , activité de lenzyme en solution (U.mg -1 ) Fonctionnalisation simple des SWCNTs

39 Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Connexion dune hydrogénase NiFe sur les MWCNTs Etude de lévolution du signal de Fe(CN) 6 4- en fonction de la quantité de MWCNTs : Courbe I(Fe(CN) 6 4- ) = f(quantité MWCNTs) linéaire entre 10 et 60 µL de MWCNTs déposés. Confirme lhypothèse daugmentation de la surface spécifique des électrodes due aux MWCNTs mais ne la valide pas : vérifier absence daccumulation de Fe(CN) 6 4- dans les MWCNTs.


Télécharger ppt "Département de Chimie Moléculaire Biosystèmes Électrochimiques & Analytiques Autoassemblage de macromolécules biologiques via des poly(pyrroles) et/ou."

Présentations similaires


Annonces Google