Le cahier de texte des BTK-2 2013-2014 titre

Bilan sur les rapports et PowerPoint des stages. Avant date Heure I Heure II TP 5-6 / 09 Enzymologie. Rappels de 1ère année 3. Les facteurs qui influencent l'activité enzymatique. 3.1. Les fact physico-chimiques. Bilan sur les rapports et PowerPoint des stages. 12-13 / 09 BTS-0 TP 01 Dosages de protéines Scatchard. 19-20 / 09 Correction du DS-0 2 Synthèse des protéines. 2.1. Biosynthèse. 26-27/09 3.2. Influence de la C en enzyme. 3.3. Influence de la C en Pdt. 2.2. Translocation. TP 02 b-galactosidase 03-04/10 3.4. Effecteurs. 3.4.1. I.N.C. 2.3. Glycosylation 1

Les AC en biotechnologie Avant date Heure I Heure II TP 10-11 / 10 3.4.2. I.C. 3.4.3. I.A.C. 3.4.4. Irréversible. 3.4.5. Activateurs. Les AC en biotechnologie Rappel: les origines. Structure. 2.1. IgG. 2.2. Classes d'Ig. TP 3 Invertase 17-18 / 10 Enz complexes. 4.1. Complexe multi-Ez 4.1.1. Pyr déshydrogénase. 4.1.2. Chaîne respiratoire. 4.2. Allostérie. 4.2.1. Manifestation. III. Diversité des AC -----> cf + tard AC = outils d'analyse 4.1. Immuno-précipitation. 4.1.1. Complexe immun.. 4.1.2. milieu liquide. VACANCES A faire pour le 4/11 DM-1 (c’est un lien qui vaut mieux que deux tu l’auras !) 07-08 / 11 4.2.2. Intérêt physiologique. 4.1.3. milieu gélosé. * Mancini Soutenance 14-15 / 11 DS-1 TP 4 Température 2

3 Avant TP 6 Effecteur I date Heure I Heure II TP Correction DS-1 TP 4 21-22 / 11 2.3.3. Contrôle de l’activité enzym Correction DS-1 TP 4 Température 28-29 /12 5. Outils de production. 5.1. Instrument d’analyse. 5.2. Techniques d’immobil *Ouchterlony * Immuno-électrophorèse TP 5 pH 05-06 / 12 5.3. Biocapteur. 4.2. Méth immuno-enz 4.2.1. Principe. 4.2.2. Méth qualitatives. 12-13 / 12 suite 4.2.2. Méth quantitatives. * techniques TP 6 Effecteur I 19-20 / 12 * Méthodes directes VACANCES 3

3 Avant TP 8 isoenzyme CCF blanc date Heure I Heure II TP TP 7 09-10 / 01 Purification 1. Principe. 2. Extrait brut * Méthodes avec compétition TP 7 Effecteur II 16-17 / 01 3. Purif 3.1. Précipitations. 4. AC outils d’analyse. 4.1. AC polyclonaux 23-24 / 01 3.2. Séparation par membrane. 3.3. Chromatographies. 3.3.1. Principe. 4.2. AC monoclonaux TP 8 isoenzyme 30-31 / 01 3.3.2. Performance. 3.3.3. Chromato classiques. CCF blanc STAGE 3

3 DS-3 Avant date Heure I Heure II TP TP 8 isoenzyme 10-11 / 04 17-18 / 04 VACANCES 3

Le tableau donne les vitesses de réaction d'une enzyme seule (témoin) ou en présence d'effecteurs (A, B, C, D et E). DM-1 S Témoin A B C D E mmol.L-1 en µmol.s-1 0,0 5 14,6 9,4 22,0 7,4 6,2 9,1 8 16,0 12,5 27,8 10,2 9,8 11,2 12 22,5 15,0 28,7 13,6 14,8 14,0 18 27,0 17,3 42,5 17,6 24,8 18,4 25 31,9 18,9 44,4 21,0 30,8 30 32,1 19,3 46,8 21,1 35,1 21,2 40 34,6 20,8 50,2 25,8 49,2 21,5 50 39,6 21,6 53,5 23,8 55,4 22,6 Tracer les graphes et calculer les paramètres enzymatiques par les méthodes: Envoyer les fichiers Excel à denape.biotech@yahoo.fr avant le lundi 4 / 11 Lineweaver et Burk. Hanes Wolf. Headie Hofsize. Einsenthal (dans le cas du témoin uniquement). retour CdT