Questions posées Comment est créée la grande diversité des différents types neuronaux (1 gène, 1 neurone ?)? Comment sont-ils positionnés correctement (de façon reproductible ?) Comment est contrôlée la forme cellulaire des neurones et ses variations (dendrites, axones ?) Comment un axone retrouve sa cible ? Comment peut-il y avoir des gradients d’innervation (conservation de la topologie)? Comment se mettent en place les synapses ? Quelle est leur plasticité au cours du temps ? Périodes critiques ?
Techniques utilisées
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) Importance techniques de marquage cellulaire et d’imagerie Utilisation d’organismes modèles (génétique) A ce moment là, j’ai parlé de la technique grasp, que je venais d’apprendre en congrès, et qui permet de marquer les synapses entre neurones Idée qu’on ne connaît pas encore tout le réseau ! Même chez l’homme
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) Importance techniques de marquage cellulaire et d’imagerie Utilisation d’organismes modèles (génétique) - Nématode (C. elegans) - Drosophile (D. melanogaster) - Zebrafish (Poisson zèbre, D. reno) - Xénope - Souris
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie Nomarski ou DIC (differential interference contrast)
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie Nomarski ou DIC (differential interference contrast)
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie Nomarski ou DIC (differential interference contrast) Développement Nématode
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie Nomarski ou DIC (differential interference contrast) Développement précoce Nématode
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à epifluorescence (champ plein)
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à epifluorescence (champ plein)
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence CONFOCALE
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence CONFOCALE
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence CONFOCALE
Techniques utilisées Observation in situ (dans l’organisme en développement) : microscopie à fluorescence CONFOCALE
nc82 Tautrap glomérules Lobes antennaires 50 µm Lobe optique calyces Confocal 20100518 Tautrapnc82 40x (à chaque image, un plan confocal sélectionné) 1024 pixels = 325,8 µm Lobe optique fait 813 pixels de large (258 µm) Lobes antennaires font 876 pixels de large (278 µm) Calyces font 1008 pixels de large (325 µm) Barre d’échelle de 50 µm par image 50 µm Lobe optique calyces
Le développement chez la droso
Le développement précoce chez la droso
Le développement précoce chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez la droso
Le développement du tissu nerveux chez les Vert
Le développement du tissu nerveux chez les Vert
Le développement du tissu nerveux chez les Vert
Le développement du tissu nerveux chez les Vert Cellules crête neurale : Mélanocytes Os, cartilage Cellules gliales SNP
L’organisateur de Spemann
L’organisateur de Spemann Domaine présomptif Détermination cellulaire (cellular commitment) Le tissu nerveux est déterminé après la gastrulation et le réarrangement cellulaire qui s’y produit (Hamburger 1969)
L’organisateur de Spemann Expérience de Spemann et Mangold - sont-ce les cellules greffées qui forment l’ensemble des tissus du second axe ? Embryon pigmenté
L’organisateur de Spemann Expérience de Spemann et Mangold - sont-ce les cellules greffées qui forment l’ensemble des tissus du second axe ? Embryon pigmenté Notion d’induction
L’organisateur de Spemann De 1932 aux années 50 : plus de 100 études essayant de caractériser l’activité inductrice - à partir de lèvres de blastopores : nature chimique (lipide extractible ou non …) - pour avoir plus de tissu, essais à partir d’autres tissus pour voir s’ils ont une activité inductrice ou non (souvent oui, par ex foie et reins) A partir des années 80, utilisation des techniques de biologie moléculaire