EXTRACTION D’ADN GÉNOMIQUE À PARTIR DE CELLULES VIVANTES

EXTRACTION D’ADN GÉNOMIQUE À PARTIR DE CELLULES VIVANTES

EXTRACTION D’ADN GÉNOMIQUE
Buts préparer l’ADN génomique à partir de deux sortes de cellules, celles de levure et celles de kiwi apprendre à rédiger un article scientifique -section des Matériels et méthodes

Objectifs pratiques exposition aux techniques de lyse cellulaire exposition aux techniques d'extraction d'ADN utilisation d'une microcentrifugeuse

Objectifs pratiques déprotéinisation d'une préparation d'ADN par extraction phénol/CHCl3 précipitation d'ADN avec de l'éthanol dosage de l'ADN (A260 et A260/A280)

LES ACIDES NUCLÉIQUES Deux classes désoxyribonucléique (ADN)
ribonucléique (ARN) ADN Réplication Transcription ARN Traduction Protéine

LES ACIDES NUCLÉIQUES ADN hélice double monotone (= double brins)
associé à plusieurs protéines (histones) sous la microscope électronique nucleosome

LES ACIDES NUCLÉIQUES nucleosome l’unité de base de la chromatine
1e niveau de compaction de l’ADN composé des histones + ADN

LES ACIDES NUCLÉIQUES ADN dépositaire de l'information génétique
génome = ensemble des chromosomes localisés dans le noyau d'une cellule seulement deux rôles: 1. diriger sa réplication lors de la division cellulaire 2. diriger la transcription d'ARNm complémentaire

LES ACIDES NUCLÉIQUES ADN - rôles ADN Réplication Transcription ARN
Protéine Traduction Transcription Réplication

EXTRACTION d'ADN GÉNOMIQUE
plusieurs méthodes choix dépend du matériel à extraire 3 étapes principales lyse cellulaire séparation de l’ADN des autres composantes cellulaires précipitation (concentration) de l’ADN

lyse cellulaire: libère l’ADN du noyau  mécanique  à l’aide de détergents N.B. Les détergents (ex. SDS) dénaturent les protéines et solubilisent les membranes. peuvent être combinés

Alors, dans les cas pertinents: les cellules de kiwi et de levure possèdent une paroi cellulaire (= barrière physique) il faut la détruire pour être capable d’isoler l’ADN génomique des noyaux des cellules

CELLULES de KIWI et de LEVURE
paroi cellulaire

Alors, dans les cas pertinents: levure billes de verre (lyse physique) mélange au vortex (lyse physique) tampon de lyse avec détergent (chimique) phénol/CHCl3 (lyse chimique)

Alors, dans les cas pertinents: kiwi écrasement par fourchette (lyse physique) tampon de lyse avec détergent (chimique)

CELLULES ANIMALES Pas de paroi : Alors,
ne nécessite pas de bris mécanique des fois un tampon hypotonique suffit pour faire éclater la cellule

lyse cellulaire: libère l’ADN du noyau séparation de l’ADN des autres composantes cellulaires  filtration ou centrifugation du lysat cellulaire  extraction des protéines (phénol/CHCl3)

lyse cellulaire: libère l’ADN du noyau séparation de l’ADN des autres composantes cellulaires précipitation (concentration) de l’ADN  précipitation à l’éthanol  colonne d’affinité (au lieu de précipitation, trousses commerciales) À noter: dans le cas des trousses utilisant une colonne effectivement les étapes 2+3 sont combinées.

QUALITTÉ/QUANTITÉ de l’ADN PRÉPARÉ
1. Estimation de la [ADN] par A260 à l’aide du spectrophotomètre bases azotées de l’ADN absorbent à 260 nm ADN doit être si pur 1 A260 = 50 µg/ml d’ADN double brin

1. Estimation de la [ADN] par A260 Problème: les protéines absorbent à 280 nm le phénol absorbe à 270 nm peut causer surestimation de [ADN] en raison de l'absorbance résiduelle à 260nm

1. Estimation de la [ADN] par A260 Solution: mesurer A280 calculer le rapport A260/A280 donne une indication de la pureté de l’ADN (±)

1. Estimation de la [ADN] par A260 Point technique: il faut que les lectures de A se situent entre 0,05 et 2,0 pour être fiables (au 2 λ)

2. Intégrité de l’ADN spectrophotométrie donne aucune information sur l’intégrité de l’ADN (c.-à-d. dégradé ou non) Pourquoi? Parce que, même si l'ADN est dégradé, les bases azotées de l'ADN sont encore présentes et absorbent à 260 nm

2. Intégrité de l’ADN souvent on utilise un gel d’agarose pour visualiser la qualité de l’ADN (permets aussi d’évaluer [ADN]) migration

direction de la migration
GELS d'AGAROSE Un exemple de BCM111: ADN génomique Pas de traînée = ADN non-dégradé ! direction de la migration

GELS d'AGAROSE Un exemple de BCM111: ADN génomique
Pas de traînée = ADN non-dégradé ! ARN

SÉCURITÉ 1. Phénol très corrosif peut causer des brûlures
Alors, les précautions: porte de gants porte de sarrau porte de lunettes de protection travailler le plus possible sous la hotte

SÉCURITÉ 1. Phénol très corrosif peut causer des brûlures
S’il y a contact de phénol/CHCl3 avec la peau: rincer avec beaucoup d’eau ensuite laver avec de l’eau et du savon ne jamais utiliser d’éthanol

SÉCURITÉ 1. Phénol récupération sous la hotte
ne jamais mettre des Eppendorfs contenant du ɸOH dans les poubelles ordinaires

SÉCURITÉ 2. Microcentrifugeuse
lire/comprendre les règles d’utilisation sur p.7. équilibrer vos tubes !

lire/comprendre les règles d’utilisation sur p.6. équilibrer vos tubes = mettre un tube équilibre en face de votre tube pour les microtubes un volume égal est souvent acceptable

SÉCURITÉ 2. Microcentrifugeuse si le rotor n’est pas balancé…
La soucoupe volante vue hier était en fait un rotor débalancé.

SÉCURITÉ 2. Microcentrifugeuse si le rotor n’est pas balancé…

s'il y a un bruit bizarre, immédiatement arrêter la centrifugeuse et vérifier

SÉCURITÉ 3. acides nucléiques en général Alors, les précautions:
dégradés par les nucléases, des enzymes qui se retrouvent partout (sur nos mains, etc.) Alors, les précautions: solutions, embouts et tubes stériles porte de gants (très important pour l’ARN)

SÉCURITÉ 3. acides nucléiques en général À noter:
uniquement cette semaine on travaille avec des embouts stériles, alors SVP ne pas remplir les boîtes avant qu'elles soient vides on demande au groupe 4 de remplir toutes les boîtes

PLAN EXPÉRIMENTAL 1. EXERCICE 1 Extraction de l’ADN génomique de levure 2. EXERCICE 2 Extraction de l’ADN génomique de kiwi. BCM111: Un coéquipier prépare l’ADN de levure pendant que l’autre prépare l’ADN de kiwi.

PLAN EXPÉRIMENTAL 1. EXERCICE 1
Extraction de l’ADN génomique de levure 2. EXERCICE 2 Extraction de l’ADN génomique de kiwi. 3. EXERCICE 3 Dosage de l’ADN (A260 + A260/A280) i) levure (BCM) ii) kiwi (BCM+TSB)

ORGANIGRAMMES aide visuel en laboratoire montre les grandes lignes
ne pas inclure tous les détails une par extraction d'ADN à mettre dans le cahier avant le labo

organigramme extraction d'ADN génomique de levure

Faire l'extraction avec seulement 500ul du SN

Lunettes et gants obligatoire
POINTS TECHNIQUES Lunettes et gants obligatoire Extraction d'ADN génomique

POINTS TECHNIQUES Extraction d'ADN génomique Levure
bien resuspendre le culot des levures dans le tampon de lyse (étape 7) le microtube + les billes contient DÉJÀ le ФOH / CHCl3 n'oublier pas de sceller votre microtube, APRÈS l'avoir fermé, avec du parafilm avant de vortexer

prélèvement de la phase aqueuse: gardez le microtube à un angle en la sortant de la microcentrifugeuse

prélèvement de la phase aqueuse: enlevez la phase aqueuse le plus vite possible

prélèvement de la phase aqueuse: prenez soin de ne pas prendre de l'interphase (laissez un peu de la phase aqueuse, étapes 12+15).

ne pas mélanger EtOH 70% et 95%

Lunettes et gants obligatoire
POINTS TECHNIQUES Lunettes et gants obligatoire Extraction d'ADN génomique Kiwi

POINTS TECHNIQUES Extraction d'ADN génomique Kiwi
n'oublier pas de peser votre ¼ de kiwi! n'oublier pas de mélanger pendant les incubations à 60oC et sur glace noter le volume de votre filtrat (étape 6, pipette de 10ml stérile) utiliser seulement 1 ml de votre filtrat pour continuer (étape 7) Attention: à la fin, tout l'ADN obtenu provient de 500ul du filtrat (important pour calculs)

prélèvement de la phase aqueuse: comme pour la levure

prélèvement de la phase aqueuse: comme pour la levure l'ADN est le matériel clair et gélatineux collé sur le bord de le microtube ne pas mélanger EtOH 70% et 95%

POINTS TECHNIQUES Estimation des petits volumes
à l'aide de la micropipette essai et erreur

POINTS TECHNIQUES Culots d'ADN portez attention de ne pas les perdre
portez attention de bien les dissoudre vérifier en regardant au travers du tube s'il n'y a plus de culot transparent et gélatineux sinon, mélanger la solution, car une solution non-homogène est nuisant à la quantification

SPECTROPHOTOMÉTRIE

SPECTROPHOTOMÉTRIE Côté rayé 3 ml 1 ml Volume minimal utiliser les côtés rayés des cuvettes pour les manipuler (cuvettes UV) essuyer les cuvettes avec un kleenex faire un blanc à toutes les longueurs d’onde

A = Ecl SPECTROPHOTOMÉTRIE Loi de Beer-Lambert:
A = absorbance (pas d'unités) E = coefficient d'extinction molaire(M-1cm-1) c = concentration (M) l = longueur (cm) A = Ecl

A = Ecl SPECTROPHOTOMÉTRIE Loi de Beer-Lambert:
l'absorbance (A) en fonction [ADN] c.-à-d pour 2 échantillons d'ADN « E » et « l » ne changent pas A = Ecl

POINTS TECHNIQUES Spectrophotométrie 2 échantillons (levure + kiwi)
bien identifier vos cuvettes! A entre 0,05 et 2,0 pour être fiable (2 λ)

POINTS TECHNIQUES Ex. spectrophotométrie
A entre 0,05 et 2,0 pour être fiable 10ul échantillon+990ul H2O donne A = 2,2 Qu’est-ce qu’il faut faire ? diluer 1:2 ou utiliser seulement 5 ul

COMPTE RENDU Partie 1 - analyse des résultats
compléter les feuilles du compte rendu dans vos notes de cours pourrait être fait en laboratoire Partie 2 - rédaction de Matériels et méthodes à l'ordinateur Remise: la semaine prochaine (parties 1+2)

PLAN DU COURS Ojectifs spécifiques
« …présenter les résultats…sous forme d'article scientifique (rapport)…»

ARTICLE SCIENTIFIQUE Sections/organisation résumé introduction
matériels et méthodes résultats discussion références peuvent être combinées

PLAN DU COURS Ojectifs spécifiques
« …présenter les résultats…sous forme d'article scientifique (rapport)…» partie 1 Sc.4 - Matériels et méthodes partie 2 Sc.9 - article au complet (Résumé, Introduction, Matériels et Méthodes, Résultats, Discussion et Références) « Guide de rédaction de rapport »

RÉDACTION D'ARTICLE Cette semaine
rédaction d'une partie de la section M+M spécifiquement l'extraction d'ADN génomique de levure

RÉDACTION D'ARTICLE Détails 2 pages max double interligne
police Times New Roman 12 pt numérotation des pages pondération: 4 pts présentation pts contenu

MATÉRIELS ET MÉTHODES Objectif principal
décrire les manipulations pour que l’expérience puisse être réalisée par un expérimentateur compétent

MATÉRIELS ET MÉTHODES Détails
style « impersonnel », c.-à-d. à la 3e personne au passé composé Ex. «..le tube a été centrifugé…» À éviter: « Nous avons centrifugé le tube…»

MATÉRIELS ET MÉTHODES Détails
style « impersonnel », c.-à-d. à la 3e personne au passé composé sous forme de texte continu (et non comme un protocole dans manuel de laboratoire) lecteur = un scientifique, alors pas de détails inutiles (Ex. type de pipette utilisée, etc.)

Consultez un article publié
MATÉRIELS ET MÉTHODES Quoi inclure ? Tout essentiel au bon fonctionnement de l’expérience. étapes principales concentrations finales (compositions des solutions/tampons) quantités conditions (température, temps d'incubation, conditions d'agitation, etc.) Consultez un article publié

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