DIAGNOSTIC BACTERIOLOGIQUE

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1 DIAGNOSTIC BACTERIOLOGIQUE
DR RADJI Cours 2e année CHIR DENT

2 Devant une infection, le clinicien réalise un prélèvement qu’il envoi au laboratoire. En attendant les résultats, il instaure un traitement probabiliste (en fonction des signes cliniques, de l’âge du patient du germe présumé et de l’épidemiologie des résistances). Le rôle du laboratoire est d’isoler, d’identifier puis de tester la sensibilité aux antibiotique du germe en cause

3 INTRODUCTION Diagnostic direct: mise en évidence de la bactérie responsable du tableau clinique, identification et étude de la sensibilité aux anti-bactériens Diagnostic indirect: mise en évidence des marqueurs biologiques (Anticorps humoraux) témoins de la multiplication bactérienne dans l’organisme

4 LES PRELEVEMENTS De la qualité du prélèvement et des conditions de son transport au laboratoire dépend la qualité du résultat

5 LES PRELEVEMENTS Règles générales:
- Avant toute antibiothérapie si possible, sinon après une fenêtre thérapeutique Asepsie rigoureuse Acheminement rapide ( à +4° polymicrobien, à 37° monomicrobien) Germes fragiles: possibilité d’ensemencement au lit du malade (méningocoque, gonocoque) Milieux de transport

6 Fiche de renseignements cliniques
Informations utiles sur le malade: âge, sexe, profession, origine géographique, etc. sur le tableau clinique: début, symptômes majeurs, type d’évolution, traitement reçus avant. Autres types d’informations spécifiques pouvant orienter le bactériologistes vers une recherche de germes particuliers.

7 Enregistrement au laboratoire
Sur registre du laboratoire Numéro date de réception au laboratoire Nom, prénom, âge et sexe Adresse ou service hospitalier, nom du médecin Nature du prélèvement

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9 DIAGNOSTIC DIRECT =» aspect du prélèvement
Examen macroscopique : =» aspect du prélèvement la présence d’un trouble, l’odeur (particulièrement pour les anaérobies), la consistance, la granulations… peuvent apporter des premières informations sur l’existence d’une infection ou non.

10 Il existe différents types de prélèvements:
Coproculture Expectorations purulentes clair LCR Clair trouble

11 2. Examens microscopiques:
état frais fourni des informations sur la forme et la mobilité des bactéries. examen à l’encre de chine : recherche de capsule. frottis colorés par le bleu, le Gram, ou coloration spécifique (Ziehl-Neelsen), IFD immunofluorescence directe…… Coloration de Gram :Gram (montre l’affinité tinctoriale du micro-organisme)

12 Permettent d’avoir des informations sur la pureté de la population bactérienne, la présence de cellules polynucléaires ou lymphocytaires Orientent les recherches ultérieures pour le choix des milieux à ensemencer, les tests à lancer rapidement et Permet parfois de donner un diagnostic de forte présomption au clinicien qui peut commencer le bon traitement immédiat

13 2- Examens microscopiques

14 État frais compte des cellules en Malassez (microscope optique X40)
Encre de Chine Utilisée pour visualiser la capsule

15 Polynucléaires coques diplocoques chainettes
Bacilles fusiforme vibrions

16 La coloration de Gram Renseigne sur la présence (ou absence) de bactéries: leur forme (cocci ou bacille, cocobacille, fusiforme) leur groupement (amas, chaînettes, diplocoques) leur gram (+ ou -) ⇒ très utile car oriente l’antibiothérapie.

17 Principe de la coloration de Gram

18 Cocci à Gram(+) en amas cocci à Gram(+) en chainettes
Bacille Gram (+) en amas Bacille Gram (-)

19 Informations sur la pureté de la population bactérienne

20 Flore fécale normale

21 après colorations ( au bleu de méthylène, le gram)

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24 AUTRES COLORATIONS: Certaines bactéries ne se colorent pas avec la coloration de Gram: Ziehl-Neelsen pour les mycobactéries : coloration des bacilles acido-alcoolo-résistants (BAAR).

25 Colorations spéciales ( exp: Ziehl Neelsen)
BAAR Bacilles acido- alcoolo-résistants = BAAR≈ mycobactéries.

26 Coloration à l’auramine
lecture au microscope à fluorescence

27 IFD (Legionella et Chlamydia trachomatis)

28 Examen au microscope à fond noir pour Treponema pallidum et IFD

29 3. recherches des Ag bactériens solubles dans les méningites bactériennes décapitées par agglutination, contre- immunoéléctrophorèse

30 4. mise en culture et isolement l’isolement sur milieux selon l’orientation clinique, le site anatomique du prélèvement : flore, type d’infection, espèces pathogènes courantes La mise en culture doit être appropriée à la bactérie suspectée Isolement sur milieux de culture - Milieux nutritifs simples - Milieux nutritifs enrichis - Milieux sélectifs Conditions d’incubation - Température ( 37, 30 ou 42° ) - Tension d’oxygène - Tension de CO2 - Durée d’incubation ( 18h, 24h, 48h, jours ou semaines) obtenir une culture: une bactérie une colonie

31 Milieux de culture MH Gélose au sang Lowenstein jensen
Flacons d’hémocultures

32 Isolement des bactéries : ⇒ milieux solides étalement et isolement en stries pour étaler les bactéries et les isoler les unes des autres. les bactéries se multiplient et donne une colonie visible à l’oeil nu au bout de 18 à 24h ou plus.

33 Incubation Etuve Jarres

34 Leur principal avantage est de détecter automatiquement et très rapidement toute croissance bactérienne en mesurant régulièrement la production de CO2 due à la multiplication bactérienne Automate BactAlert® (Biomerieux) pour les hémocultures

35 5. Identification des bactéries: à partir de culture pure
caractères morphologiques caractères culturaux : ●Aspect des colonies, ●Pigmentation ●Vitesse de croissance caractères biochimiques caractères antigéniques (sérotypie) intérêt épidémiologique exp: salmonella

36 BCP HK HK SS GSF

37 Milieu de culture contenant des substances chromogènes qui vont permettre de mettre en évidence une activité enzymatique spécifique de l’espèce recherchée, entraînant l’apparition de colonies bactériennes colorées. Milieu chromogènes spécifique pour Salmonella

38 2 types de colonies Culture pur

39 Corynrbacterium diphteriae

40 Streptococcus du groupe A
Hémolyse atour de la colonie Chainettes Streptococcus du groupe A

41 Listeria monocytogenes

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43 Staphylococcus aureus

44 Identification de la bactérie (suite)
Réalisée sur une population bactérienne « pure » L’étude microscopique ( état frais et colorations) Caractères culturaux ( morphologie, durée, conditions physiologiques) Tests biochimiques explorant le métabolisme glucidique, protidique et lipidique Tests explorant les conséquences du métabolisme Détection de produits de dégradation métaboliques ou d’enzymes impliquées dans la réaction

45 Gram à partir d’une culture

46 Identification de la bactérie ( suite)
Etude antigénique: Etude des antigènes de groupe ou de type portés par la bactérie à l’aide de sérums spécifiques connus, par des réaction immunologiques d’agglutination ou de précipitation de l’antigène bactérien par l’antisérum spécifique connu. caractères antigéniques (sérotypie) intérêt épidémiologique exp: salmonella

47 La galerie biochimique d’identification:
Tests biochimiques La galerie biochimique d’identification: Contient des tests plus lents (résultat en 4h à 24h) basés sur l’étude de la fermentation de sucres et des caractères enzymatiques. _ _ + + +

48 Automate d'identificationVitek2® Compact (BioMérieux)

49 6. Les tests de sensibilité aux antibiotiques
L’ Antibiogramme

50 résistance naturelle aux polymyxines (image en cocarde).

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53 DIAGNOSTIC INDIRECT Mettre en évidence la réaction immunitaire de l’organisme infecté: Humorale: production d’anticorps Indications : le diagnostic d’infection due à une bactérie de croissance difficile ou impossible (Syphilis, rickettsiose, leptospirose, maladie de lyme…) Tester 2 sérums à 15 jours d’intervalle.

54 Recherche des anticorps spécifiques = sérodiagnostic
principe: complexe immun Ag – Ac Techniques: immuno-précipitation, immuno-agglutination, IF et immuno-enzymatique ELISA +++ • Analyse quantitative : titre • Analyse qualitative : classe des Ig, G ou M.

55 Sérodiagnostic De Wright dilutions du sérum (du 1/10 au 1/640e)
Sérodiagnostic de Widal-Felix Sérodiagnostic De Wright dilutions du sérum (du 1/10 au 1/640e)

56 sur lame (Epreuve à l'antigène tamponné ou rose bengale test dans la brucellose) sur sérum non dilué

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58 Quelques exemples de sérodiagnostic:
- Brucellose : agglutination (Wright), Antigène tamponné ou Rose bengale - Chlamydioses : ELISA - Legionellose : IFI, ELISA - Lyme (maladie) : ELISA - Mycoplasmes : ELISA - Rickettsioses - Coxiella : IFI - Salmonelloses : anti-typhoparathyphoïdiques (Widal-Félix) par agglutination - Infections à Streptocoques du groupe A : anti-streptolysines, anti-strepdornases, anti-streptokinases - Syphilis : TPHA, FTA, TPI, ELISA

59 La sérologie n’est pas fiable:
Infection ancienne Vaccination Antigénnicité croisé pour plus de fiabilité: 02 titrages à 15 jours d’intervalle recherche des IgM primo-infection

60 BIOLOGIE MOLECULAIRE Recherche du génome bactérien: spécificité ++
Intérêt application pour les bactéries non cultivables ou celles à croissance lente ou difficile 02 techniques: - hybridation par les sondes - PCR

61 Amplification enzymatique in vitro ou polymerase chain réaction (PCR)
Consiste à synthétiser in vitro des milliers de copies d’une séquence spécifique de l’ADN bactérien (automates) La révélation du produit amplifié se fait soit par hybridation soit par électrophorèse sur gel d’agarose et visualisation de la bande d’ADN

62 Principe de la technique PCR
1- ADN double brin 2- Dénaturation thermique (ouverture des 2 brins ) 3- Hybridation des amorces ( sens et anti-sens) 4- Elongation ou synthèse ( ADN polymérase+ désoxynucléotides) hybridation d’un néo brin d’ADN complémentaire de l’ADN d’origine 5- Continuation de la réaction par réactions successives de dénaturation/ hybridation sous l’action de la température (chauffage, refroidissement) aboutissant à la fabrication d’un grand nombre de fragments d’ADN copies du fragment original Diagnostic bactériologique. 2007

63 Principe de la PCR

64 les cycles de la PCR

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68 Merci