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BCM311 - TP de biochimie II Automne 2015
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Évolution des TPs - vers autonomie
BCM111 - TP conventionnel – projet décrit, méthodes données, matériel préparé BCM311 - TP semi autonome – projet décrit, méthodes données
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Pourquoi des T.P. semi-autonomes
Rendre autonome Apprendre à planifier Apprendre à évaluer des résultats Apprendre de ses erreurs Comprendre ce que vous faites Mime la vraie vie
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T.P. semi-autonome - fonctionnement
préparation des solutions par équipe par table par groupe entretien des appareils dîner labo partagé avec d'autres cours continu des tiroirs étiquetage des échantillons entreposés préparation et distribution
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Plan de la présentation
équipe de support Plan de cours - dans mes mots BCM311 - les séances fonctionnement et ressources formation des équipes pause café sécurité - vidéo
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Équipe de support Professeur: Daniel Lafontaine (D8-3064) Coordonnateur: Will Home (D8-2059) Auxiliaires d'enseignement: Jade Degrandmaison (ATCase) Jade Degrandmaison (biomol) Chantal Binda (LDH) Techniciennes: Lucie Paradis (ATCase+LDH) Chantal Masse (biomol)
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Plan de cours - objectif général
faciliter l’acquisition des connaissances sur le métabolisme et les macromolécules biologiques cycle de Cori LDH foie muscle sang
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Objectifs spécifiques
mieux connaître les grandes voies métaboliques établir les relations qui existent entre ces voies métaboliques connaître et appliquer les techniques modernes de la biochimie
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Objectifs spécifiques
développer l'esprit d'analyse et de synthèse porter un jugement sur les résultats de ses expériences apprendre à communiquer des informations scientifiques
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Les laboratoires journées complètes en laboratoire 3 gros laboratoires de 2-3 jours chacun sujets différents laïus (D7-2016) préparation des solutions manipulations (+analyses) ménage + vérification du cahier dîner
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ATCase 2 journées (10 et 17 septembre) préparation de l'enzyme cinétique allostérique
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ATCase - contrôle d'activité
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ATCase - cinétique Vmax/2 +ATP native +CTP
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Biologie moléculaire 3 journées (24 septembre, octobre) préparation d'ADN plasmidique enzymes de restriction (carte de restriction) PCR gel d'agarose extraction et analyse d’ARN de foie de lapin
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Biologie moléculaire - REN et cartes
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Biologie moléculaire - PCR
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Biologie moléculaire - extraction d'ARNt
foie de lapin
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Purification de protéines
3 journées ( octobre, 5 novembre) extraction et purification de la LDH de lapin homogénéisation précipitation au (NH4)2SO4 colonne d'affinité bleu sepharose comparaison des niveaux dans les tissus "Western blot" (gel SDS-PAGE) gel natif (gel d'activité, isoenzymes)
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Purification de protéines - gel SDS-PAGE
LDH purifiée
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Purification de protéines - gel SDS-PAGE
Gel Blot LDH
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Purification de protéines - gel natif
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Examens deux journées (12 et 19 novembre) examen pratique examen écrit
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Pondération En équipe 15% rapport ATCase 15% rapport et comptes rendus LDH 10% comptes rendus biologie moléculaire 5% cahier de laboratoire Individuel 10% travail de session 10% examen pratique 35% examen écrit À noter: heure de remise est TOUJOURS 8H30 à l'exception des comptes rendus de biologie moléculaire et du travail de session modification de la note: limite d'une semaine après la remise
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Pondération - plagiat mentionnez vos sources déclaration d'intégrité
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Travail de session protocole pour la purification d’une enzyme Objectifs: travailler individuellement utiliser la littérature scientifique analyser un article scientifique voir autres techniques de purification
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Travail de session - l'hypothèse
votre patron pense faire des études sur l'enzyme assignée vous demande de faire les recherches préliminaires sur les méthodes de purification et de dosage
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Travail de session trouvez un article récent (après 1991) sur comment purifier une enzyme assignée faut être de la source originale (c.-à-d. pas de clonage/expression) résumer la méthode de purification résumer la technique pour la doser liste du matériel requis (c.-à-d. non-commun) vérifiez si la protéine a déjà été clonée
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Travail de session - organisation
6 sections 1. Introduction 2. Purification (organigramme) 3. Quantification (dosage) 4. Matériel 5. Discussion 6. Documentation
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Travail de session - détails
Dates attribution 10 septembre approbation de l’article 8 octobre remise novembre
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Cahier de laboratoire 5% de la note finale lien direct avec la qualité des rapports organisé + clair rédigé au laboratoire (c.-à-d. protocole + résultats – utilisez des tableaux) faire vérifié + signé avant que vous quittiez voir détails dans les notes de cours
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Cahier de laboratoire utilisez des tableaux De quoi ??
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Cahier de laboratoire - tableaux
C'est quoi ??
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Cahier de laboratoire exemples de calculs présence des unités à toutes les étapes réponse claire avec les unités
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Cahier de laboratoire si vous faites une erreur...
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Fonctionnement et ressources
site internet
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Fonctionnement - comportement
appareils en commun banc paillasse (faire approuver avant de quitter) laїus verrerie
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Verrerie verrerie sale pipettes sales
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Verrerie enlever les bouchons des bouteilles enlever les pieds des cylindres gradués enlever toutes les étiquettes immédiatement rincer toute trace d’agarose récupération
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Verrerie enlever les bouchons des bouteilles enlever les pieds des cylindres gradués enlever toutes les étiquettes immédiatement rincer toute trace d’agarose récupération
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Verrerie récupération verre brisée éprouvettes jetables
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Fonctionnement - ménage quotidien
labo partagé avec d'autres cours liste dans votre tiroir avant de partir sera vérifié embouts ne pas mettre dans le tiroir boîte moitié vide - retournez au buffet boîte vide - remplissez (gants) et envoyer à stériliser
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Ménage quotidien Vos solutions sont étiquetées (cours, date, contenu, No d'équipe, initiales) et à 4oC (places désignées par cours et tables). Manque d’échantillon = perte de points. La verrerie utilisée est rincée et déposée dans les bacs de verrerie sale. Les boîtes d'embouts sont remplies (portez des gants, envoyé à l'autoclave au besoin). Les bacs de glace sont vidés.
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Ménage quotidien Les poubelles de table sont vidées (remplacer le sac seulement si sale). Tout matériel se retrouve dans les tiroirs dans les quantités indiquées. Les instruments sont fermés, propres et rangés. Remplir les flacons laveurs. Les paillasses sont propres - désinfectant.
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Ménage quotidien Les bancs sont replacés sous les tables. Vos effets personnels partent avec vous. Vos mains sont propres.
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Fonctionnement - retards
pas tolérés laïus commence à 8h30 (porte sera fermée) remise des travaux - 8h30 (sauf biomol et TS) note = 0 si en retard
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Fonctionnement - préparation
longues journées arriver préparé: lecture -notes de cours -site web (changements, consignes) -calculs (au besoin) écouter pendant le laїus
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Jour 1 - ATCase I lecture préparatif
section d’Introduction générale théorie du laboratoire ATCase révision de cinétique (Annexe I, site web) protocoles pertinents (I-III, p ) télécharger le logiciel GraphPad toujours apporter vos portables solutions à préparer calculs de [carbamyl asparte] pour la courbe standard et [aspartate] pour les dosages
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logiciel pour faire les graphiques
GraphPad logiciel pour faire les graphiques il faut le télécharger sur votre portable D/21782/subscription/FPQQTEQI
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GraphPad Remplir les champs
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Jour 1 - ATCase I lecture préparatif
section d’Introduction générale théorie du laboratoire ATCase révision de cinétique (Annexe I, site web) protocoles pertinents (I-III, p ) télécharger le logiciel GraphPad toujours apporter vos portables solutions à préparer calculs de [carbamyl asparte] pour la courbe standard et [aspartate] pour les dosages
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Jour 1 - ATCase I lecture préparatif
section d’Introduction générale théorie du laboratoire ATCase révision de cinétique (Annexe I, site web) protocoles pertinents (I-III, p ) télécharger le logiciel GraphPad toujours apporter vos portables solutions à préparer calculs de [carbamyl asparte] pour la courbe standard et [aspartate] pour les dosages
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Jour 1 - préparation du cahier
achat noms, # équipe, # des pages, table de matières titre date objectif référence protocole écrit AU LABORATOIRE
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Fonctionnement - sécurité
acides-bases entreposage de concentrés produits chimiques centrifuges et rotors
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Sécurité – évitez les situations semblables
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Sécurité - analyse de risques
4 questions à poser avant une expérience Quels sont les risques? Quelles sont les pires choses qui pourraient arriver? Comment est-ce que je dois me préparer? Quels sont: -les mesures de précaution -les outils de sécurité -l’équipement de protection à prévoir pour minimiser les risques?
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Sécurité - personnelle
porte de sarrau obligatoire porte de lunettes de sécurité obligatoire 1 minuteur/étudiant (cellulaire)
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Sécurité - personnelle
porte de pantalons longs porte de soulier à talons plats et fermées aux 2 bouts (sandales) port de gants appropriés (au besoin, jamais avec le bruleur, changez-les souvent)
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Fonctionnement - sécurité vente
aujourd'hui à 11h30 D8-2019 5 ou 8 $ $ /18$ (régulières; par-dessus) (nitrile, bte de 250)
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Sécurité - personnelle
brûlure chimique - NaOH 1M (brûlure grave en moins de 15 secondes)
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Fonctionnement - sécurité - ressources
SSMTE (santé et sécurité en milieu de travail et d'études)
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Fonctionnement - sécurité
règlements (p. Introduction-10) BCM111: Annexe 4 - sécurité en laboratoire Internet: Installations évacuation 811
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Fonctionnement - sécurité
règlements (p. Introduction-10) BCM111: Annexe 4 - sécurité en laboratoire Internet: Installations évacuation Vidéo: « Sécurité en laboratoire » (30 min) 811
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Compte rendu LDH I - solutions
1 par équipe (p.LDH-67) remettre la semaine prochaine (8h30)
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Compte rendu LDH I - solutions
1 par équipe (p.LDH-67) remettre la semaine prochaine (8h30) Attention quantités (faut que ça soit réalisable, au besoin utiliser des solutions mères, etc.) certaines solutions peuvent être utilisées comme solutions mères détails de la préparation précautions à prendre
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Compte rendu LDH I - solutions
plusieurs solutions sont dans du Tris-Cl 50mM pH7,4 (et seulement 10 ml est demandé) simplement dissoudre le peu de grammes du produit requis dans ce tampon ne pas peser le Tris de nouveau à chaque reprise respecter le volume demandé
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Solutions dans TRIS-Cl 50 mM pH 7,4
Ex.: 10 ml de Tris-Cl 50 mM pH 7,4 / NADH 1mM 10 ml Tris-Cl 50 mM pH 7,4 7,1 mg NADH et non 60,6 mg Tris Dissoudre dans <10 ml, ajuster pH à 7,4, compléter le volume à 10 ml avec de l'eau. Pas évident avec 10 ml !
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Dilutions 1/5 et 1:5 même chose = 1 volume + 4 volumes solvant, car on voit le mot dilution Solutions 1:5 si on voit le mot solution (e.g. pour CCM) 1:5 = 1 part + 5 parts des 2 composées (c.-à-d. un rapport des volumes) Ex. solvant pour CCM des lipides en BCM111 : : : CHCl Et2O H triéthylamine
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Rappels - semaine prochaine
remettre compte rendu LDH#1 (1/équipe) apporter vos portables télécharger GraphPad sur vos portable (instructions dans les notes de cours) calculs de [carbamyl asparte] et [aspartate] lunettes de sécurité, gants et minuteurs (aujourd'ui au D à 11h30, chèque payable à l’Université de Sherbrooke) cahier
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BCM311 - Questions ? Automne 2013
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Formation des équipes formations des équipes pause de 15 min vidéo sur sécurité en laboratoire
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