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Le cahier de texte des BTK-2 2013-2014. dateHeure IHeure IITP 5-6 / 09 Enzymologie. Rappels de 1 ère année 3. Les facteurs qui influencent l'activité

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1 Le cahier de texte des BTK-2 2013-2014

2 dateHeure IHeure IITP 5-6 / 09 Enzymologie. Rappels de 1 ère année 3. Les facteurs qui influencent l'activité enzymatique. 3.1. Les fact physico-chimiques. Bilan sur les rapports et PowerPoint des stages. 12-13 / 09 BTS-0 TP 01 Dosages de protéines Scatchard. 19-20 / 09 Correction du DS-0 2 Synthèse des protéines. 2.1. Biosynthèse. TP 01 Dosages de protéines Scatchard. 26-27/09 3.2. Influence de la C en enzyme. 3.3. Influence de la C en Pdt. 2.2. Translocation. TP 02 -galactosidase 03-04/10 3.4. Effecteurs. 3.4.1. I.N.C. 2.3. Glycosylation TP 02 -galactosidase Avant

3 dateHeure IHeure IITP 10-11 / 10 3.4.2. I.C. 3.4.3. I.A.C. 3.4.4. Irréversible. 3.4.5. Activateurs. Les AC en biotechnologie I.Rappel: les origines. II.Structure. 2.1. IgG. 2.2. Classes d'Ig. TP 3 Invertase 17-18 / 10 4.Enz complexes. 4.1. Complexe multi-Ez 4.1.1. Pyr déshydrogénase. 4.1.2. Chaîne respiratoire. 4.2. Allostérie. 4.2.1. Manifestation. III. Diversité des AC -----> cf + tard IV.AC = outils d'analyse 4.1. Immuno-précipitation. 4.1.1. Complexe immun.. 4.1.2. milieu liquide. TP 3 Invertase VACANCES A faire pour le 4/11 DM-1 (cest un lien4/11 DM-1 qui vaut mieux que deux tu lauras !) 07-08 / 11 4.2.2. Intérêt physiologique. 4.1.3. milieu gélosé. * Mancini Soutenance 14-15 / 11 DS-1 TP 4 Température Avant

4 dateHeure IHeure IITP 21-22 / 11 2.3.3. Contrôle de lactivité enzym Correction DS-1 TP 4 Température 28-29 /12 5. Outils de production. 5.1. Instrument danalyse. 5.2. Techniques dimmobil *Ouchterlony * Immuno-électrophorèse TP 5 pH 05-06 / 12 5.3. Biocapteur. 4.2. Méth immuno-enz 4.2.1. Principe. 4.2.2. Méth qualitatives. TP 5 pH 12-13 / 12 suite 4.2.2. Méth quantitatives. * techniques TP 6 Effecteur I 19-20 / 12 * Méthodes directes TP 6 Effecteur I VACANCES Avant

5 dateHeure IHeure IITP 09-10 / 01 Purification 1. Principe. 2. Extrait brut * Méthodes avec compétition TP 7 Effecteur II 16-17 / 01 3. Purif 3.1. Précipitations. 4. AC outils danalyse. 4.1. AC polyclonaux TP 7 Effecteur II 23-24 / 01 3.2. Séparation par membrane. 3.3. Chromatographies. 3.3.1. Principe. 4.2. AC monoclonaux TP 8 isoenzyme 30-31 / 01 3.3.2. Performance. 3.3.3. Chromato classiques. CCF blanc STAGE Avant

6 dateHeure IHeure IITP 10-11 / 04 DS-3 TP 8 isoenzyme 17-18 / 04 VACANCES Avant

7

8 STémoinABCDE mmol.L -1 en µmol.s -1 00,0 514,69,422,07,46,29,1 816,012,527,810,29,811,2 1222,515,028,713,614,814,0 1827,017,342,517,624,818,4 2531,918,944,421,030,818,9 3032,119,346,821,135,121,2 4034,620,850,225,849,221,5 5039,621,653,523,855,422,6 Le tableau donne les vitesses de réaction d'une enzyme seule (témoin) ou en présence d'effecteurs (A, B, C, D et E). Tracer les graphes et calculer les paramètres enzymatiques par les méthodes: Lineweaver et Burk. Hanes Wolf. Headie Hofsize. Einsenthal (dans le cas du témoin uniquement). Envoyer les fichiers Excel à denape.biotech@yahoo.fr avant le lundi 4 / 11 denape.biotech@yahoo.fr retour CdT DM-1


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