Différenciation endothéliale et processus angiogéniques

Slides:



Advertisements
Présentations similaires
Compartiment vasculaire
Advertisements

Le métabolisme Phospho-calcique
Dr Christophe BURUCOA Laboratoire de Microbiologie A CHU Poitiers
Quynh Hoa NGUYEN Master 2 Microbiologie fondamentale et appliquée
A. Tchirkov1, T. Khalil1, E. Chautard1, K. Mokhtari2, L. Veronese1, B
THROMBOCYTEMIE ESSENTIELLE Aspects cliniques et biologiques
Du métastatique à l’adjuvant – place à définir des thérapies ciblées dans ce contexte Valérie Boige.
Cytogénétique.
LE PHENOTYPE malin Dr. Valentin CERNEA
La cellule cancéreuse et son microenvironnement
Pr Oliver Bouché CHU Reims Cancers du côlon et biothérapies ciblées.
PRELEVEMENTS DE CELLULES SOUCHES Docteur Ridha BOUZGARROU
Thérapeutiques ciblées en cancérologie
PHYSIOLOGIE DE L’HEMOSTASE PRIMAIRE
DEFICITS IMMUNITAIRES
A caspase-dependent cleavage of CDC25A generates an active fragment activating cyclin-dependent kinase2 during apoptosis A Mazars, A Fernandez-Vidal, O.
DEATH SIGNAL-INDUCED LOCALISATION OF P53 TO MITOCHONDRIA
(Bases cellulaires et moléculaires de l ’ostéoporose)
Différenciation des cellules intestinales
La voie Notch dans la différenciation intestinale
LAHMAR Qods SAID ALI Bahia
Cours 4 Notions de cellules souches dans l’intestin récapitulatif
C. ALBERT Service de Rhumatologie Pr EULLER-ZIEGLER
Cellules souches et cellules proliférantes
Modèles mathématiques d’angiogenèse
HÉMATOPOÏÈSE EMBRYONNAIRE ET FOETALE
LE FROTTIS SANGUIN obtenir sur une lame de verre une couche unicellulaire d'éléments figurés du sang répartis sur tout le frottis et fixés dans.
Expérience Pédagogique
Depuis plus de 50 ans, Roche s'engage dans le développement de nouvelles molécules contre le cancer. En effet, depuis 1962, Roche a ouvert de nombreuses.
Pathophysiologie de la maladie veino-occlusive
Les cellules souches des muscles squelettiques adoptent un état de dormance après la mort et garde leur capacité de régénération Chabaud-Francioni Sarah.
Les Cellules dendritiques
Patterning dorso-ventral chez vertébrés
Vie et mort d’une cellule
Méthode d ’étude de la cellule normale et pathologique : Mise en culture des cellules et tissus Master M1: cellule normale à cellule cancéreuse Dr Mossuz.
LES CELLULES SOUCHES HÉMATOPOÏÉTIQUES HUMAINES NORMALES : RÉGULATION ET MÉTHODES D’EXPLORATION S. Fichelson, 17 Juin 2004 – 5èmes journées du GFM - Rouen.
JONCTIONS, ADHÉSION, MATRICE EXTRA CELLULAIRE
COMMUNICATION INTERCELLULAIRE RECEPTEURS MEDIATEURS
Lésions histologiques du SDRA
Le métabolisme Phospho-calcique
ORGANES LYMPHOÏDES PRIMAIRES OU CENTRAUX Thymus Moelle osseuse
LE ROLE DES CYTOKINES Professeur Lionel Prin – Immunologie – Lille 2
JONCTIONS, ADHÉSION, MATRICE EXTRA CELLULAIRE
JONCTIONS, ADHÉSION, MATRICE EXTRA CELLULAIRE
ERYTHROPOÏESE I - Définition II - Rappel III - Progéniteurs
communication cellulaire
PHYSIOPATHOLOGIE DE LA
Cellules "tueuses naturelles" = cellules NK (Natural Killer)
Différenciation des cellules lymphoïdes T
Seminaire du DESC Chirurgie thoracique et cardio-vasculaire
LES CYTOKINES PRO-INFLAMMATOIRES (1)
Figure 1. Les cellules tumorales prostatiques utilisent le binôme SDF-1/CXCR4 pour cibler l’os Moelle osseuse PCa CXCR4 SDF Figure I. D’après Taichman.
HEMATOPOIESE DEFINITION:
LÉSIONS INDUITES PAR LA VENTILATION MÉCANIQUE (Ventilator Induced Lung Injury ou VILI) Christophe Guervilly- MARSEILLE DESC Réa Med 2004.
Différenciation des Chondrocytes
PHYSIOLOGIE DE LA FIBRINOLYSE
Généralités sur le système immunitaire
Evaluation ex vivo et in vitro
PERSPECTIVES D’AVENIR
HEMATOPOÏESE Dr. Bougherira S..
Présenté par Catherine Gravel Supervisé par Dr Hugo Soudeyns
Adipocyte Réseau de fibrilles Fibroblaste Sinusoïde médullaire Artériole Mégacariocyte Ostéoclaste Macrophages et plasmocytes Ilôts erythroblastiques.
Régulation physiologique de la réponse immunitaire
Les cytokines.
REPARATION TISSULAIRE et CICATRISATION
Programme de la CANCEROLOGIE FONDAMENTALE DCEM1 Mardi 12 janvierECN 138Cancérogenèse tumoralePr J.P. MAROLLEAU Mardi 19 janvierECN Epidémiologie.
Interactions entre les systèmes immunitaire et osseux Claudine Blin Abdelilah Wakkach Equipe "ostéoimmunologie, inflammation et immunosuppression" Nice,
Les Cellules Souches Hématopoïétiques (CSH)
Cytokines M. Alessandra Rosenthal-Allieri – décembre 2011.
Modèles mathématiques d’angiogenèse. I. Les mécanismes biologiques de l’angiogenèse *: Reproductive and cardiovascular disease.
Transcription de la présentation:

Différenciation endothéliale et processus angiogéniques Université de Reims Champagne Ardenne CHU de Reims EA3801 Différenciation endothéliale et processus angiogéniques Pr Philippe NGUYEN EA3801 et Laboratoire d’Hématologie

- Corps de Weibel Palade (ME) Cellule endothéliale 1 à 6 10 13 cellules Poids total : 1 kg Surface : 1 à 7 m2 - Corps de Weibel Palade (ME) - Facteur Willebrand - PECAM1 (CD31) / VE-Cadhérine (CD144) - Synthèse de NO (eNOS) - JAMS/Esélectine/VEGFR2 Cellules aplaties (L:100 µm-l:10 µm Épaisseur :0,3 µm) disposées en mosaïque

Angiogénèse ANGIOGENESE POST-EMBRYONNAIRE, NON TUMORALE : angiogénèse : prolifération capillaire, favorisant le flux sanguin vasculogénèse : à partir de progéniteurs endothéliaux artériogénèse : développement des réseaux collatéraux (résistance) Différenciation Migration / Prolifération Hypoxie Facteurs de croissance/Cytokines HIF-1a VEGF, FGF, IGF…

Cellule progénitrice endothélial :  endothelial progenitor cell (PEC) Différenciation et acquisition d’un phénotype endothélial à partir d’une cellule souche hématopoïétique CD34+ [Asahara, 1997] Circulating bone marrow-derived endothelium progenitor cells (CEPCs) [Rafii, 1998] : CD34+ Marqueurs phénotypiques : facteur von Willebrand, Dil-Ac-LDL.

Isolement des cellules CD34+ Sang de cordon 1. Isolement des PBMC 2. Élimination des cellules adhérentes 3.Tri immuno-magnétique des cellules CD34 positives 4.Mise en culture dans des « conditions endothéliales » (VEGF …) 

Facteurs de croissance (VEGF…) Modèle de différentiation des cellules CD34+ en progéniteurs endothéliaux (PEC) J0 J25-30 Facteurs de croissance (VEGF…) Cellule souche CD34+ Progéniteurs endothéliaux Analyse de l’expression membranaire et moléculaire à différent temps de la différenciation: VEGF, VEGFR1,VEGFR2,CD144(VE-cadhérine), et FT

Caractérisation des PEC Culture cellulaire À partir de sang de cordon, de sang périphérique Support : gélatine, fibronectine, collagène de type I Facteurs de croissance : VEGF, IGF-1, EGF, FGF-B Temps d’obtention Aspect des colonies : Cellules adhérentes « spindle shaped » Tapis de cellules fusiformes précoces tardives

Phénotype des PEC CD133 (AC133) : Exprimé par la CSH Absent de la cellule endothéliale mature et du monocyte Différenciation endothéliale in vitro CD34 : marqueur de cellule souche hématopoïétique Présent (faible expression) sur la cellule endothéliale mature VEGF-R2 (KDR) : Marqueur endothélial

Phénotypage des PEC par cytométrie en flux VEGFR2 EPC HUVEC CD34 Count CD34 : PBMC de sang de cordon PEC : en milieu de culture adapté HUVEC : Cellules endothéliales matures EA3801

Origine (multiple) des précurseurs endothéliaux Hémangioblaste HSC Progéniteurs Myéloïdes Progéniteurs Endothéliaux Monocyte

Progéniteurs endothéliaux circulants CD14+ CD34+ Monocyte PEC PEC CD14+,CD34low, KDR+ CD34+, CD133+, KDR+ Sous-type myéloïde « True angioblast » Leri, Circ Res 2005

Origine et différenciation des progéniteurs endothéliaux, d’après Dimmeler, 2004.

Caractérisation des PEC X 40 Mesure de la prolifération Expansion Migration cellulaire Formation de tubes : (Matrigel) Activité paracrine : synthèse de facteurs de croissance : VEGF, HGF, G-CSF, GM-CSF Modèles animaux : Implant de Matrigel Modèle d’ischémie de la patte (ligature de l’artère fémorale) Rehman, 2003 ; Hur, 2004

Sources possibles de cellules endothéliales Cellules souches : CSH, cellules souches « cardiaques », cellules souches mésenchymateuses, Cellules myéloïdes : CD14+/VEGF-R2+ CD34-/CD133- : Acquisition de marqueurs endothéliaux phénotypiques Formation de tubes in vitro Cellules endothéliales matures : shedding vasculaire

Mobilisation des « PEC » Moelle osseuse Cellules stromales médullaires MMP-9 mKitL cKit+ Hémangioblaste sKitL Barrière endothéliale Sang Précurseur hématopoïétique circulants PEC circulants D’après Hristov, 2003

Mobilisation des PEC Micro-environnement, « niches » : Protéinases : Fibroblastes, ostéoblastes, cellules endothéliales Protéinases : Élastase, cathepsine G, métalloprotéinases matricielles (MMP) Clivage de mkitL (kit ligand membranaire) par MMP-9 Facteurs de croissance G-CSF, GM-CSF, EPO SDF-1, VEGF, angiopoïétine

Processus de réparation endothéliale par les PEC Cellule endothéliale Circulante (CEC) CD146 + CD31 + PEC vWF+ intégration CE Matrice extracellulaire CML Transdifférenciation D’après Hristov, 2003

Comparaison CEC versus PEC Cellule mature, provenant de la paroi vasculaire Témoin d’une lésion vasculaire Expression de marqueurs endothéliaux : CD146, vWF, CD31… Pas d’expression des marqueurs CD45/CD133 Pas de potentiel clonogénique Progéniteur Témoin d’une lésion vasculaire ? D’une régénération ? Faible expression de CD146, CD31 Faible expression de CD45, expression de CD133 Potentiel clonogénique 20 cellules/mL

Dimmeler, 2004

Différents phénotypes endothéliaux Cellule « tip » Leader Filopodes étendus Signaux de direction Migration à travers la matrice extracellulaire Cellule « stalk » Prolifération Vacuoles créant la lumière vasculaire Produit la matrice Cellule « phalanx » Devient quiescent Monocouche Jonctions serrées Contact avec le péricyte

Induction et déstabilisation de la paroi capillaire Induction par hypoxie HIF : complexe hétérodimérique sensible à l’hypoxie En hypoxie : dimérisation et activation des gènes cibles (HRE : promoteurs) Déstabilisation de la paroi capillaire : sortie de la quiescence endothéliale NO libéré lors de l’hypoxie : favorise la perméabilité induite par le VEGF VEGF : VEGF-R2 : activité tyrosine kinase (MAPK/PI3K) Angiopoiétines

Facteurs de croissance angiogéniques VEGF Effet via les récepteurs VEGF-R1 (flt-1) et VEGF-R2 (flk/KDR) : activité tyrosine kinase Favorise la migration et la prolifération endothéliale Augmente la perméabilité vasculaire Angiopoïétine-1 Effet via le récepteur Tie2 (tyrosine kinase) Effet sur l’engagement des précurseurs endothéliaux Effet sur la migration endothéliale Pas d’effet sur la prolifération endothéliale Recrutement des péricytes Angiopoïétine-2 Expansion cellulaire b-FGF Anti-apoptotique, activation d’Akt

Inhibiteurs de l’angiogénèse Angiostatine 38 kDa, 3 kringles Générée par protéolyse du plasminogène par métallo-élastases et MMP Induit l’apoptose des cellules endothéliales Inhibe la prolifération endothéliale Endostatine 20kDa, fragment du collagène XVIII (cathépsine L, élastase) Inhibition de la migration endothéliale (dépendant de eNOS) Pro-apoptotique (réduction de Bcl-2, Bcl-XL) Thrombospondine-1 Glycoprotéine haut poids moléculaire Ligand de CD36 Pro-apoptotique (p38-MAPK : activation des caspases)

Progéniteurs de la cellule endothéliale Source Procédé d’isolement Marqueurs cellulaires Moelle osseuse Microbilles CD133+ CD146-, CD133+, CD31-, vWF-,VE-cadhérine - Sang de cordon Microbilles CD34+ CD133+ Sang périphérique Adhésion PBMC CD133+ ou CD133- CD146 : marqueur de la cellule endothéliale circulante

Identification des PEC dans un produit de thérapie cellulaire EA 3801

Identification des PEC dans un produit de thérapie cellulaire EA 3801