Quantifier les Microorganismes

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1 Quantifier les Microorganismes

2 Méthodes Mesure de turbidité Comptes viables Nombre le plus probable
Comptes directs

3 Nombre le Plus probable: NPP
Fondé sur les statistiques de probabilités Test présomptif fondé sur des caractéristiques données Technique en bouillon

4 Nombre le Plus Probable (NPP)
Commencer avec un bouillon qui permet de déceler les caractéristiques désirées Inoculer differentes dilutions de l’échantillon à être testé dans chacun de 3 tubes Dilution 3 Tubes/Dilution 1 ml de chaque dilution dans chaque tube Après une période d’incubation approprié, enregistrer les TUBES POSITIFS (qui ont de la croissance et les caractéristiques désirées)

5 NPP- Suite L’objectif est de DILUÉ l’organisme à zero
Après l’incubation, le nombre de tubes qui démontre les caractéristiques désirées sont enregistré Exemple de résultats pour une suspension de 1g/10 ml de terre Dilutions: Tubes positifs: P : Nombre de tubes positifs N : Quantité totale en (g) ou (ml) d’échantillon dans tous les tubes négatifs T : Quantité totale en (g) ou (ml) d’échantillon dans tous les tubes

6 NPP Calcul = 9/0,001 = 9 000 bactéries/g Dilutions: -1 -2 -3 -4 -5 -6
Tubes positifs: P = 9 N = (3 X (0,1 X 10-5) + (3 X (0,1 X 10-6) T= (3 X (0,1 X 10-1) + (3 X (0,1 X 10-2) + … (3 X (0,1 X 10-6) = 9/0,001 = bactéries/g

7 Comptes Directes L’échantillon à être énuméré est appliqué sur une lame d’hémacytomètre qui retient un volume fixe dans une chambre de comptage Le nombre de cellules est compté Le nombre de cellules dans le volume donné est déterminé

8 Déterminer le Compte Direct
Compter le nombre de cellules dans trois carrés indépendants 8, 8 et 5 Déterminer la moyenne ( )/3 =7 Donc 7 cellules/carré

9 Déterminer le Compte Direct (suite)
1mm Depth: 0.1mm 1mm Calculer le volume d’un carré: = 0.1cm X 0.1cm X 0.01cm= 1 X 10-4cm3 ou ml Diviser le nombre moyen de cellules par le volume d’un carré Donc 7/ 1 X 10-4 ml = 7 X 104 cellules/ml

10 Problème Un échantillon de 500μl est appliqué à une lame d’hémacytomètre avec les dimensions suivantes: 0.1mm X 0.1mm X 0.02mm. Des comptes de 6, 4 et 2 cellules ont été faits dans trois carrés indépendants. Quelle était le nombre de cellules par millilitre dans l’échantillon original si la cellule de comptage possède 100 carrés?

11 Colorations Différentielles
Microscopie Colorations Différentielles

12 Coloration de Gram Divise les bactéries en deux groupes
Gram Négatives & Gram Positives

13 Gram Positives Colorées Mauves Bacille Coccus
Genres: Bacillus et Clostridium Coccus Genres: Streptococcus, Staphylococcus et Micrococcus

14 Gram Négatives Colorées Rouges Bacille: Coccus:
Genres: Escherichia, Salmonella, Proteus, etc. Coccus: Genres: Neisseria, Moraxella et Acinetobacter

15 Paroi Cellulaire Gram + Vs Gram - Paroi Peptidoglycane Membrane
Couche de Lipopolysaccharide Absente Paroi Peptidoglycane Membrane Plasmique

16 Méthode - Coloration Primaire
+ Coloration avec le cristal violet Ajout d’iode de Gram (Mordant) + + Paroi :peptidoglycane LPS Membrane plasmique Gram positif Gram Négatif

17 Méthode - Étape Différentielle
Lavage à alcool Paroi est déshydratée – Complex colorant + iode est piégé Paroi n’est pas déshydratée – Complex n’est pas piégé Paroi :peptidoglycane LPS Membrane plasmique + + Gram positif Gram Négatif

18 Méthode - Contre Coloration
+ Coloration avec la Safranine + + Paroi :peptidoglycane LPS Membrane plasmique + Gram positif Gram Négatif

19 Sommaire Fixation Coloration primaire Violet de cristal Lavage
Décoloration Contre coloration Safranine

20 Coloration Acido-Alcoolo-Résistante
Coloration diagnostique de Mycobactérium Pathogènes de la Tuberculose et de la Lèpre Paroi cellulaire avec acide mycoïque

21 Méthode Principe: Contenu élevé de composés similaires aux cires dans la paroi cellulaire, Acide Mycoïque, rend ces bactéries très résistantes aux colorants

22 Méthode (Suite) La paroi est rendue perméable par la chaleur
Coloration avec de la fuchsine basique Refroidissement retourne la paroi à son état imperméable Colorant est piégé Lavage avec de l’alcool acide Étape différentielle Mycobactéries retiennent le colorant Autres bactéries perdent le colorant

23 Coloration de Spores Spores: Cellule bactérienne différentiée
Résistante à la chaleur, la déshydratation, les ultraviolets, et différents traitements chimiques Typique des bacilles Gram positifs Genres Bacillus et Clostridium Conditions défavorables induisent la sporogénèse Différenciation de cellule végétative à l’endospore

24 Coloration au Vert de Malachite
Spores Sporangium Endospore Cellules végétatives Perméabilisation des spores par la chaleur Coloration primaire au vert de malachite Lavage Contre coloration à la safranine

25 Les Pathogènes

26 19e Siècle- Robert Koch Étudie la maladie de l’anthrax qui tue le bétail Fait croître la bactérie à partir du sang d’animaux malades en culture pure Bacillus anthracis Observations: Le sang d’animaux malades transmet la maladie Le microorganisme se retrouve seulement chez les animaux malades Le microorganisme crû en laboratoire transmet la maladie aux animaux sains

27 Robert Koch (suite) Conclusion: Les microorganismes sont responsables des maladies Les pathogènes Ces résultats mènent Robert Koch à élaborer des lignes directrices pour l’association d’un microorganisme à une maladie Les postulats de Koch

28 Postulats de Koch  Le microorganisme doit être présent dans chaque cas de maladie, mais absent des organismes sains Le microorganisme suspect doit être isolé et cultivé en culture pure La maladie doit se développer quand le microorganisme isolé est inoculé dans un hôte sain Le même microorganisme doit être isolé à nouveau de l’hôte malade