Le Rein : Un organe multifunction 1. L’équilibre hydrominérale et acido-basique. osmolarité et volume des fluides du corps balance des electrolytes balance acide-base 2. Excréteur produits du métabolisme: Déchets azotés: urée, créatinine, acide urique (métabolites pouvant être toxiques s’ils s’accumulent) substances exogènes (pesticides, médicaments, produits chimiques etc.) 3. Maintien de la Pression sanguine Soit par sécrétion d’hormones : la rénine va provoquer une augmentation du taux d’angiotensine, Soit par le contrôle de la natrémie (sodium dans le plasma) et de la volémie (volume sanguin). 4. Fonction endocrine -erythropoiétine, EPO, Stimule la synthèse des globules rouges dans la moelle osseuse -1,25-dihydroxy vitamin D3 (vitamin D active ) -rénine -prostaglandine, 5- Fonction métabolique les reins sont les seuls organes (avec le foie), capables de néoglucogenèse. Dans le cas d’un jeune prolongé, le rein peut assurer jusqu’à 50% de la néoglucogenèse.

Circulation sanguine Pour un organe d’environ 150g

Circulation sanguine

Circulation sanguine 60

Circulation sanguine 60 mmHg

Methodes d’étude in Vivo

Mesure de la fonction rénale : La clairance La clairance rénale est une mesure physiologique évaluant l'excrétion d'une substances filtrées, réabsorbées et/ou sécrétées par le rein. Elle se définit comme étant le volume de plasma virtuel épuré par unité de temps par le rein rapporté a une surface corporelle (1,73 m2 chez l'Homme). Plus une clairance est élevée, plus le pouvoir d'épuration pour cette substance est élevé.

Notion de clairance: Le concept de clairance rénale repose sur la loi de conservation de masse à savoir que: ** la quantité d’une substance filtrée par le rein [P] x DFG ,  où [P] = la concentration plasmatique de cette substance où DFG = la filtration glomérulaire ** est égale à la quantité éliminée dans l’urine [U] x V, où [U] = la concentration urinaire de la substance en question où V = le débit urinaire

Notion de clairance: [P] x DFG = [U] x V la filtration glomérulaire peut être calculée très simplement [U] x V [P] La clairance d’une substance librement filtrée et complètement éliminée par le rein, est égale au débit de filtration glomérulaire. DFG =

Notion de marqueurs ou traceurs: La filtration glomérulaire peut être mesurée par la clairance d’un marqueur (endogène ou exogène) à condition que celui-ci remplisse les conditions suivantes : -Elimination exclusivement par filtration glomérulaire -Aucune sécrétion tubulaire -Aucune réabsorption tubulaire -Aucune excrétion extra-rénale -Absence de liaison avec des protéines plasmatiques -Aucune fixation dans les tissus -Absence de réaction métabolique -Absence de toxicité

La clairance de l’inuline est un moyen de mesurer la DFG DEBIT DE FILTRATION GLOMERULAIRE - CLAIRANCE INULIN La quantité filtrée par le glomérule = La quantité excrétée dans l’urine Quantité filtrée = Pin . DFG Donc Pin . DFG = Uin . V Quantité excretée = Uin . V Uin . V Pin Uin . V Pin DFG = Ci = C’est pareil que La clairance de l’inuline est un moyen de mesurer la DFG

Notion de marqueurs ou traceurs: Inuline ou créatinine pour DFG L’inuline est un polysaccharide végétale filtré, mais ni réabsorbé, ni secrété, ni métabolisé, et que l’on peut donc injecter dans l’organisme pour mesurer le débit de filtration glomérulaire. La créatinine, produit de dégradation des protéines musculaires, est normalement présente dans le plasma, et présente une clairance proche de celle de l’inuline largement utilisée, en pratique clinique, pour évaluer la filtration glomérulaire.

90

Stades des insuffisances Rénales 120 Stage 90 Stage 1 Traitement étiologique, ↓ FDRCV, ↓ progression 60-90 Stage 2 Vaccination HVB, 30-59 Stage 3 Prudence dans la prescription de nombreux médicaments, Traitement des complications 15-29 Stage 4 Nombreux état secondaire inflammation, anémie préparation de EER <15 Stage 5 Epuration Extra-Rénale (EER) - transplantation

Etude de la fonction rénale, Mesure du Débit de Filtration Glomérulaire, méthode de clairance Injection par la veine jugulaire (marqueur de la fonction rénale inuline) U x V Ci = DFG = P Cion EF = Ci Prélèvement de sang par l’artère fémorale Pi prélèvement d’urine par l’uretère Ui et V Echantillons de sang Echantillons d’urine

L’essor des micro-techniques La méthode de clairance totale ne renseigne pas sur les zones du néphron impliquées dans le processus de transport. Le développement de microtechniques analytiques (Richards et col). a permis l’étude expérimentale (en laboratoire de recherche) des fonctions tubulaires qui caractérisent les principaux segments du néphron. L'utilisation systématique de ces méthodes complémentaires a permis de constituer entre les années 1930 et 1950 un corpus considérable de données expérimentales dont l'ouvrage de référence, « The kidney, structure and function in health and disease" publié par Homer Smith en 1951, représente une synthèse magistrale. (La bible des Néphrologues) (la bibliographie comporte 2300 références !).

Etude du taux de filtration d’un simple néphron de son absorption ou sécretion Techniques microscopiques A- Micro-ponction en Free-flow B- micro-perfusion en stopped-flow C Micro-perfusion en continue D- Tubule isolé perfusé

micro-ponction en Free-flow TF du TD

Single nephron glomerular filtration rate (SNGFR) L’application au niveau d’un simple néphron du concept de clairance Cx = TFx x Volume collection rate Px [solute] in tubule fluid at site (TFx), volume flow at site (collection rate) plasma conc. (Px).

Microperfusion en stopped-flow Bien pour chercher et comprendre comment le fluide est modifié par les différents processus de transport Mais ne reproduit pas la physiologie du flux continue du fluide tubulaire

Microperfusion en continue En Parallèle on peut réaliser des mesures electrophysiologiques

Tubule perfusé isolé

Physiologie Rénale et Méthode In vitro

Modèles IN VITRO (évaluation de la néphrotoxicité) Devant la complexité du rein (hétérogénéité structurale et fonctionnelle), il sera difficile in vivo, voir impossible, de cerner les mécanismes cellulaires et biochimiques impliqués dans les pathologies et les toxicités induites par les médicaments Il sera possible in vivo de détecter une insuffisance rénale ou une néphrotoxicité induite par un dosage de la GFR ou RPF, mais il sera impossible d’en étudier les mécanismes responsables

Modèles IN VITRO d ’évaluation de la néphrotoxicité C’est pourquoi un certain nombre de modèles in vitro ont été progressivement introduits, tels que les organes isolés, les suspensions cellulaires, les cultures cellulaires et les éléments subcellulaires Etude des mécanismes précis par introduction des modèles in vitro

Méthodes IN VITRO d’évaluation de la cible rénale Il est aujourd’hui admis que la contribution des tests in vitro peut être essentielle: dans le screenning de molécules dans la phase initiale de leur découverte dans l’identification des mécanismes impliqués dans la toxicité dans l’identification des protéines impliquées Génome, Transcriptome, Protéosome

Les cultures cellulaires Définition: Les cultures cellulaires, selon la définition du comité de terminologie de l’association américaine de culture de cellules, correspondent au maintien en dehors de l’organisme de cellules non-organisées en tissus mais capables de se diviser et d’exprimer in vitro des métabolismes spécifiques. “Maintenir in vitro des cellules possédant tout ou une partie des caractéristiques qu’elles manifestent in vivo et pouvant aboutir dans certaines conditions de culture à une véritable organisation tissulaire”.

Culture Primaire Avantages: Inconvénients: A partir de cellules isolées mécaniquement Avantages: Technique rapide et permet d’obtenir beaucoup de cellules. Pas d’utilisation enzymatique Tranche de cortex ou medullaire Broyage Tamisage Re-suspenssion du culot, puis mis en culture Inconvénients: Utilisable sur très peu d’espèce, mélange de type cellulaire

Culture Primaire A partir de segments de néphron isolés individuellement par micro-dissection Perfusion à la collagénase du rein broya et incubation à la collagènase Avantages: Obtenues directement à partir d’un segment de néphron Leur origine est connue (étude inter-espèces possibles) Possèdent les fonctions spécifiques transitoirement conservées = MODELES PERTINENTS CAR PROCHE DE LA REALITE Préparation lourde Nombre de passage limité (phase G1,) Durée de vie variable Inconvénients

Modèle cultures de lignées cellulaires Elles sont définies comme étant des populations cellulaires présentant les caractéristiques suivantes -Elles peuvent être subcultivées indéfiniment -Elles possèdent un nombre de chromosome et /ou une morphologie normale

Modèle culture lignées cellulaires LLC-PK1: Lignée rénale tubulaire Proximale Porc Modèle d’étude des fonctions des cellules tubulaires (transport, enzymes caractéristiques de la mb apicale, fortes activités enzymatiques d ’origine lysosomiales, jonctions membranaires) MDCK Lignée rénale tubulaire Distale Chien Modèle d’étude des fonctions des cellules tubulaires (expression des récepteurs aux hormones, régulation du pH)

Réabsorption et Sécretion voie de transfert des solutés      Etudes des mouvements ioniques à travers le tissus isolé Méthode de la chambre de Ussing

Structure et fonction de la barrière épithéliale Tight junctions & perméabilité paracellulaire cellules épitheliales lumière Jonction serrée EQSA novembre 2007

un outil classique de la physiologie… La chambre de Ussing un outil classique de la physiologie… Démonstration du caractère actif du transport (pas de gradient électrochimique) Principe = pas de forces s’exerçant sur le mouvement des ions (gradient de concentration, pH, gradient de pression, de température.. Donc seul l’activité des transporteurs est en cause = transport actif - Permet la mesure qualitative et quantitative des mouvements ioniques Ussing HH and Zerahn K. Active sodium as the source of electric current in the short circuited isolated frog skin. Acta Physiol Scand 23: 110, 1951 Schultz SG and Zalusky R. Ion transport in isolated rabbit ileum. I. : Short circuit current and Na fluxes. J Gen Physiol 47: 567, 1964

La chambre de Ussing … un outil classique de la physiologie… Démonstration du caractère actif du transport (pas de gradient électrochimique) : Mesures qualitative et quantitative des mouvements ioniques - Accès aux faces séreuse et muqueuse de l’épithélium (application pharmacologiques..) Application aux tissus, biopsies, cellules en culture sur filtre … Ussing HH and Zerahn K. Active sodium as the source of electric current in the short circuited isolated frog skin. Acta Physiol Scand 23: 110, 1951

Chambre de Ussing Le courant de cour-circuit Injection d’un courant qui neutralise la ddp transépithéliale Isc muqueux séreux ddp (mV) O mV Peau, Intestin, biopsie..

Mélange gazeux (carbogène) Système thermostatée Chambre 1 Chambre 2 Tissu Electrode « potentiel » Oxygénation I2 I1 V2 V1 Electrode « courant » Boitier « relai » avec le millivoltmètre et le microampéremètre

Un poste complet de mesure des courants de court-circuit.. Interface avec microordinateur Microordinateur Bain-marie Oxygène, 95% CO2, 5% Micro-voltmètre et Micro-ampèremètre réunis dans un Voltage Clamp automatique Chambres de Ussing

Diffusion simple de solutés au travers des membranes La membrane est perméable aux: -Molécules non polaires -Lipides solubles (stéroïdes). -Molécules polaires de petite taille et non chargée comme l’eau La membranes est imperméable aux: -Grosse molécules polaires (glucose). -Aux Ions (Na+). Protéines de transport

Voies de passage des solutés Voie paracellulaire Une barrière: les jonction serrées Eau , Cl- Petites molécules hydrosolubles Voie transcellulaire Multiples mécanismes de passage

Les jonctions cellulaires trouvées dans une cellule

Différence de potentiel trans-épithéliale Ddp = Vapi -Vbl V api + - V bl lumière Epithélium (tube rénal)

Différence de potentiel trans-épithéliale le long du néphron POTENTIELLE TRANSEPITHELIAL LE LON DU NEPHRON TCP TCD -2mV -45mV Epithelium lâche Epithelium serré Cortex - 39mV +7mV Médullaire TC AH

La cellule rénale fait face à deux milieux différents l’urine et le plasma

Absorption paracellulaire et transcellulaire de l’eau H2O H2O Jonction sérrée Na+ Diffusion passive Voie Paracellulaire Grâce au gradient local de Na+ qui est excrété de façon active sur les parois des Cellules proximale Voie transcellulaire Avec glucose et Na+

Passage paracellulaire: Tubule proximal La paroi du tubule proximale formée de cellules collées entre-elles à leur pôle apical par des jonctions lâche. L’espace intercellulaire est petit et s’accroît progressivement vers la profondeur C’est dans cet espace que sont éliminés de façon active des ions Na+ créant ainsi un gradient osmotique capable de faire passer les molécules d’eau par les jonctions des cellules proximales junction Espace intercellulaire riche en Na+ Membrane basale

Les mécanismes de passage transcellulaire

Les mécanismes de passage transcellulaire En masse Endocytose (Pinocytose, phagocytose) Sous forme moléculaire Passif vs actif Avec ou sans l’aide d’une protéine

Transports ioniques et moléculaires

Principe de passage à travers la membrane plasmique La membrane est une bicouche lipidique dont la partie centrale est hydrophobe L’hydrophobicité de la partie centrale de la membrane empêche le passage de la plupart des molécules polaires La cellule a besoin de système de transport pour absorber (ou éliminer) des substances polaires

Transport à travers la membrane plasmique

Mécanismes de transport à travers les cellules Directement à travers la membrane Diffusion et osmose (osmose =diffusion de l’eau) En lmpliquant une protéine membranaire: Canaux (canaux ioniques) et pores (porines) Débit=107-108 ions par sec Transporteurs diffusion facilitée: uniport transport actif : symport; antiport Débit=102-104 molécules par sec Pompes Protéines qui hydrolysent l’ATP appelées ATPases Débit=102-103 ions par sec

Débits des systèmes de transfert

Canaux, pores et transporteurs Aquaporines = transport de l’eau Ionophores = transport des ions Uniport = transport d’une seule substance Transports couplés : transport simultané de 2 substances ou plus Symport: transport de 2 substances dans la même direction Antiport: transport de 2 substances en direction opposée

Les protéines de transport membranaire

Mécanismes de transport à travers les cellules Avec besoin ou non d’énergie: Transport passif: Le long d’un gradient de concentration Ne nécessite pas d’ATP Ex: osmose; diffusion & diffusion facilitée; Transport actif Mouvement net contre un gradient de concentration Requiert directement ou indirectement de l’ ATP

Les 2 types de transport actifs Primaire (direct) Pompes membranaires ATP-dépendantes qui demandent une source directe d’énergie pour fonctionner Secondaire (indirect) mouvement d’une substance contre son gradient électrochimique grâce à un cotransportage (symport ou antiport) avec un autre élément dont le gradient est maintenu par ailleurs de façon active

Transport actif Transport actif primaire La cellule utilise de l’énergie Le mouvement de molécules survient contre leur gradient de concentration. Transport actif primaire L’énergie est fournie par l’hydrolyse de l’ATP. C’est le cas des ATPases Antiport uniport Ext Ext Int Int ADP + Pi ADP + Pi ATP ATP H-ATPase Ca2+-ATPase Na-K-ATPase H-K-ATPase

Transport actif secondaire -L’énergie est fournie par le gradient chimique favorable pour le transport d’un autre composé (généralement donnée par le sodium). -Pas d’utilisation d’ATP pour transporter le soluté transporté contre son gradient chimique. Na+ Glucose Na+ aa Na+ Ext Ext Ext Int Int Int H+ Symport Symport Antiport Moteur du transport = gradient chimique du sodium

Potentiel de membrane [cation]B W = R.T.Ln W = z.F.E [cation]A EK 15mM Na+Cl- 150mM Na+Cl- 150mM K+Cl- 15mM K+Cl- Membrane imperméable Membrane perméable Au K+ seulement K+ Voltmètre EK 15mM Na+Cl- 150mM Na+Cl- 150mM K+Cl- 15mM K+Cl- W = R.T.Ln [cation]B [cation]A - + W = z.F.E K+ - + K+ - + Membrane perméable Au K+ seulement

z.F.E = R.T.Ln [cation]B [cation]A Eion = R.T z.F Ln [cation]Ext Potentiel d’équilibre : équation de NERNST EQUATION DE NERNST R= cte des gaz,T= température absolue, Z= valence et F= cte de Faraday Le flux ionique, né d’un gradient de concentration, est auto-limité par le gradient électrique qu’il génère z.F.E = R.T.Ln [cation]B [cation]A Eion = R.T z.F Ln [cation]Ext [cation]Int Eion = 58,2. log [cation]Ext [cation]Int

gK+>gCl->>gNa+/Ca2+ K+ ~139 mM Na+ ~12 mM Cl- ~4 mM HCO3- ~12 mM X- ~ 138 mEq Mg2+ ~0.8 mM Ca2+ <2.10-3 mM K+ ~4 mM Na+ ~145 mM Cl- ~116 mM HCO3- ~29 mM X- ~ 9 mEq Mg2+ ~1.5 mM Ca2+ ~1.8 mM -70 mV 3 Na+ 2 K+ ATP gK+>gCl->>gNa+/Ca2+

Potentiel d’équilibre des ions Eion (Volts) = 58 . log [C+]2 / [C+]1 100 -100 75 -50 -75 50 -25 25 ENa+ Si gNa augmente Potentiel (mV) On dépolarise ECl- Em EK+ Si la perméabilité de la membrane cytoplasmique pour une espèce ionique augmente, le potentiel de membrane se rapproche au potentiel d’équilibre de cet ion

Potentiel electrochimique Jion = (Vm - Eion) POTENTIEL D'EQUILIBRE GRADIENT ELECTRO-CHIMIQUE FLUX NET EK = - 87 mV Vm - EK = -70 - (-87) = + 17 mV SORTANT ENa = + 60 mV Vm - ENa = -70 - (+60) = - 130 mV ENTRANT ECa = + 120 mV Vm - ECa = -70 - (+120) = - 190 mV ECl = - 61 mV Vm - ECl = -70 - (-61) = + 9 mV ÉQUILIBRE Par convention, le flux net est positif quand un cation a tendance à sortir de la cellule et est négatif quand le cation a tendance à y entrer. +

Quasiment à l’équilibre Flux de transport NET des ions Flux net : force électrochimique Jion = (Vm - Eion) Ions Intracellulaire (mM) 140 Na+ 10 5 K+ 150 110 Cl- 5 - + - + - + Quasiment à l’équilibre - + Le flux net d'une espèce ionique au travers de ses propres canaux est proportionnel à son gradient électrochimique.

La Filtration Glomérulaire La barrière

Le corpuscule de Malpighi + glomérule Capsule de Bowman Le corpuscule de Malpighi

La Filtration Glomérulaire Feuillet pariétal Globules rouges et blancs, Eau, minéraux, plaquettes, protéines, lipides… déchets du plasma, glucose… Feuillet viscéral

La barrière de filtration Endothelium fenestré Processus Primaire P1 podocyte cell body Secondaire P2 (pedicelle) Fente de filtration lame basal Espace de Bowman Endothelium fenestré pedicel Fente de filtration Lame basale capillaire

La barrière de filtration

Facteurs qui déterminent la filtrabilité glomérulaire -Taille, poids moléculaire (filtre pores et fentes) -Charge de la molécule (lame basale)

Filtrabilité des constituants En fonction du poids Constituant Mol. Wt. dalton Filtration taux Urea 60 1.00 Glucose 180 Inulin 5,500 Myoglobin 17,000 0.75 Hemoglobin 64,000 0.03 albumin 69,000 0.01 Taille limite > 10, 000 MW

Filtrabilité des constituants En fonction de la charge Macromolécule rayon filtration taux Albumine 36 0.01 Dextran neutre 36 0.15 Dextran sulfate (-) 36 0.01 Dextran diethylaminoethyle (+) 36 0.042 La lame basale est composée de glycoprotéines chargées négativement et empêche le passage des macro-molécules négatives.

La Filtration Glomérulaire Le processus

Forces de Starling impliquées dans la Filtration:

La Filtration Glomérulaire Mechanisme: flux Direction du mouvement : du glomérule capillaire vers la capsule Driving force: Gradient de Pression (Pression Net de filtration, PNF) Types de Pressions impliquées: Force en faveur: Pression hydrostatique du Capillaire sanguin (PC), Force contre: Pression hydrostatique de la Capsule de Bowman (PB) et pression osmotique colloidale (oncotique) (POC)

PNF = ∆PHydro – ∆Ponco = (60-18) - (32 -0) PNF = 42 - 32 = 10 mmHg PC = (60-18) - (32 -0) PNF = 42 - 32 = 10 mmHg PB PC PB PC PB PNF

DFG = Kf x PNF DFG = 12.5 x 10 DFG = 125 ml/min Le système urinaire DFG = Kf x PNF Ou Kf est coefficient de perméabilité (ml/min/mmHg (inclut la surface et la perméabilité du fluide) PNF est pression net de filtration (mmHg) DFG = 12.5 x 10 DFG = 125 ml/min 125ml/min = 180 l/jour

LE GLOMERULE - L’EQUILIBRE DE STARLING mm Hg PH-PHF 40 30 20 10 PGS Pression Colloidale Net filtration force aff. art eff. art. À la sortie des artérioles efférentes: arrêt de la filtration La pression de Filtration décroît le long des capillaires glomérulaires parce que la Pression oncotique des protéines (Ponc) augmente progressivement. Cette augmentation est due à la non filtration des protéines qui se concentre dans un volume plasmatique réduit La filtration glomérulaire est un cas particulier des échanges capillaires puisque le transfert est unidirectionnel :filtration sans réabsorption en raison de la valeur exceptionnellement élevée de Pression capillaire glomérulaire (Pcap)

Facteurs modifiant la FG Les Facteurs qui altèrent la pression de filtration change la DFG Flux sanguin rénal Concentration de Protéine plasmatique déficit en protéine Pression hydrostatique dans la capsule Obstruction uretère Œdème du rein Pression Hydrostatique du glomérule Pression artérielle (hémorragie) Constriction artériole efférente ou afférente Kf Néphrites, diabète

Régulation de la DFG : ajustement du flux sanguin DFG est régulée par 3 mécanismes Autorégulation Rénale Stretch Myogenique Feedback Tubulo-glomerulaire (Macula densa, cellules Juxta-glomerulaire) 2. Régulation Nerveuse 3. Régulation Hormonale Tout ces mécanismes régulent la pression sanguine rénale et donc le flux sanguin qui en résulte

Suite à une augmentation de la pression artérielle les mécanismes autorégulateurs du rein empêchent de grandes variations de DFG et du DSR Autoregulation is the ability of the kidney to maintain a stable gfr via controlling the afferent arteriole resistance by 2 ways Myogenic Tgm feedback 86

Reflex myogénique (50% d’autorégulation) Autorégulation de DFG Reflex myogénique (50% d’autorégulation)  Pression artérielle Myogenique – reaction of the vascular smooth muscle cells Ie decrease in BP means decraesed flow to kidneys therefore dilate to alllow for more flow across If there is an increase in BP the smooth muscle cells are stretched and therefore contract which increases resistance to flow and maintains GFR and RBF constant Immediate response (

Le Mécanisme? Stretch Myogenique -Ajustement de la résistance de l'artériole afférente (Propriété intrinsèque du muscle lisse vasculaire à l'étirement) Élévation de la pression induit une diminution du rayon et une augmentation des résistances Diminution de la pression induit une augmentation du rayon et une diminution des résistances si  de PA vasoconstriction ----- si  de PA vasodilatation

Mécanisme Myogénique de l’auto-régulation 1 3 2 1 2 3

2. Rétroaction tubulo-glomérulaire (50% d’autorégulation) Autorégulation de DFG 2. Rétroaction tubulo-glomérulaire (50% d’autorégulation)  Pression artérielle Increased arterial pressure causes increased pgc which increases flow to the tubules Increased nacl with increased flow, macula densa cells sense this and generate a signal to vasoconstrict the afferent arteriole and decrease the gfr which is done via adenosine This is a delayed response 15 sec

Feedback Tubulo-glomerulaire

Feedback Tubulo-glomerulaire FG 1 2 Flux tubulaire Glomérule Artériole afférente Tube proximal distal Anse de Henle collecteur Macula densa Cellules juxtaglomérulaires 1 2 3 4 5 efférente 3 Flux via macula densa 4 Libération d’adénosine par la macula vers l ’artériole afférente 5 Constriction artériole afférente Résistance artériole afférente flux sanguin du glomérule Rétrocontrôle tubuloglomérulaire Régulation du DFG détéction par macula densa Médiateur = Adénosine P hydrostatique glomérule FG

DSR DFG Vasoconstriction Vasodilatation ARTÉRIOLE AFFÉRENTE ARTÉRIOLE EFFÉRENTE aa ae

Sglt2 = 90% de la réabsorption du glucose,(affinité faible 5 mM, Glut 2 S2 segments Tubule Proximal S3 Glut 1 sglt1 Sglt2 = 90% de la réabsorption du glucose,(affinité faible 5 mM, et capacité de transport élevé) Stoechiométrie:1Na+/1G GLUT 2 = Faible affinité, Km 20mM Sglt1 = 10% de la réabsorption du glucose (affinité très élevée 0.2mM et capacité de transport faible) Stoechiométrie:2Na+/1G GLUT 1 = Forte affinité, Km 1.5 mM

350 mg / min 0.7 et 1.1 g / L 3 g / L

Vitesse de réabsorption Réabsoption: NOTION DE TAUX MAXIMAL (ex: Glucose) QF = DFG x P QR = Tm 350 Vitesse de filtration (mg/min) Vitesse de réabsorption (mg/min) 1 3 5 1 3 5 Glycémie (g/l ) Glycémie (g/l) QE = QF – QR = DFG x P -Tm Vitesse d ’excrétion (mg/min) 1 3 5 Glycémie (g/l)

NOTION DE TAUX MAXIMAL (ex: Glucose) mg Filtration mg/min Transport maximal (Tm) Réabsorption QR = Tm 350 QR = QF Excrétion Seuil rénal QE = QF – QR = DFG x P -Tm 1 3 5 QE = QF – QR = 0 Seuil rénal Glucose librement filtré par le glomérule et réabsorbé chez le sujet normal Transport saturable: quantité réabsorbée=quantité filtrée (T = DFG x Pg) jusqu’à Tm puis, réabsorption  filtration: glycosurie Tm = 350mg/min correspondant à P = 3 g/l (seuil rénal)

En réalité glycosurie apparaît pour P = 1 En réalité glycosurie apparaît pour P = 1.8g/l car il y a une inflexion de la courbe de réabsorption liée à une Hétérogénéité de Tm entre les tubules Le débit urinaire croit lentement jusqu’à ce que P = 3.5g/l ; Au delà l’excrétion du Glucose est proportionnelle à P. La capacité de réabsorption de tous les néphrons est atteinte. Tm = 350mg/min

(125 x P) - Tm P (125 x P) + Tm P

Transport dans le Tubule proximal

Transport dans le Tubule proximal