BENLARIBI IMANE HALIMA Pharmacienne praticienne spécialiste Assistante en Parasitologie _ Mycologie médicale REPUBLIQUE ALGERIENNE DEMOCRATIQUE ET POPULAIRE MINISTERE DE LA SANTE, DE LA POPULATION ET DE LA REFORME HOSPITALIERE INSTITUT NATIONAL DE FORMATION SUPERIEURE PARAMEDICALE CONSTANTINE Filière: Larorantin de santé public Année: 2018/2019

I.Définition /Indications/Limites II.Préparation du malade III.Prélèvement/ Technique de conservation IV.Fiche de renseignement V.Examen parasitologique des selles VI.Examen après concentration VII.Techniques de coloration VIII.Coproculture en parasitologie

La coprologie parasitaire = l’examen parasitologique des selles (EPS) M.E.E et identification Des parasites et champignons vivant dans le T.D Selles :moyen d’élimination dans le milieu extérieur

Cas d’oxyures Cas de Tænia saginata Scotch test anal Phase coprologiquement muette Giardiose,Amibiase Répéter l’examen 3 fois/ 3-4j d’intervalle Phase de migration larvaire Diagnostic Sérologique

Enterobius vermicularis

Ascaris lumbricoides

Eviction de médicaments opaques non absorbables; – Charbon végétal – Produits de contraste – Substances grasses: huile laxatif, suppositoires ↗volume de culot (centrifugation)/ pellicule de flottation

Eviction d’aliments laissant beaucoup de résidus; – Légumes secs, – Légumes verts, – Fruits à cuticules résistantes – Grains à enveloppes sclérifiées, – Fruits à grains nombreuses et de petite taille

Eviction d’aliments et médicaments colorants les selles; – Betterave – Charbon – Fumafer

Avant toute thérapeutique Antiparasitaire. – Ex: métronidazole, fluvermal …etc.

Selles fraiches du matin; Dans une boite propre, sec, large couvercle, fermée hermétiquement, étiquetée; 30 – 50 g de selles non mélangées aux urines.

L’idéal au laboratoire; Rapidement acheminée au laboratoire (-1h)

Ankylostoma duodenale Necator americanus

L’idéal au laboratoire; Rapidement acheminée au laboratoire (-1h) Sinon la conservée dans un fixateur;

Conservation des vers 1 ère étape: Lavage à l’eau physiologique 2 ème étape: Fixation: 3 ème étape: Conservation: alcool à 70°. Nématodes Alcool à 70° bouillant Nématodes Alcool à 70° bouillant Trématodes Alcool à 70° bouillant, 1V Alcool à 70° bouillant +1V formol 10% Trématodes Alcool à 70° bouillant, 1V Alcool à 70° bouillant +1V formol 10% Cestodes Alcool à 70° bouillant, 90ml Alcool à 90° bouillant + 10ml formol Cestodes Alcool à 70° bouillant, 90ml Alcool à 90° bouillant + 10ml formol

Nom prénom âge du patient L’adresse(zone urbaine, rurale, d’endémie) La notion de séjour en zone d’endémie Les habitudes culinaires Le tableau clinique et les signes para clinique Notion d’un terrain d’immunodépression Notion de traitement en cours notamment antiparasitaire

Comporte obligatoirement: L’examen direct entre lame et lamelle d’un étalement mince de la selle fraîche ; L’examen après une concentration par deux méthodes de routine.

Examen direct Comporte : Un examen macroscopique e Et Un examen microscopique

Examen macroscopique Consistance

Consistance: Teneur en eau + la vitesse de transit. Les selles : moulées, molles, très molles ou liquides. +Mucus ou sang,. Indicateur: la présence de formes végétatives ou de kystes de protozoaires.

Consistance: Plusieurs prélèvement: – Selles contiennent du sang et du mucus, – Selles liquides. – Selles moulées.

Examen macroscopique Consistance Couleur

Examen macroscopique Consistance Couleur parasitaires Eléments surajoutés Présence de sang, mucus… -anneaux de Tænia -adules d’Ascaris -adules d’Oxyure

Aspect d’une selle normale: Poids: 110 – 150 g ; Couleur: brune ; Consistance: ferme moulée ; ph ≈ 7 ; Examen microscopique: – Fibres musculaires bien digérées =corps de Nothnagel ; – Cellulose non digestible =poils et vaisseaux spiralés ; – Amidon: régime est riche en féculents.

Etat frais (G Χ10,GΧ40) selle Verre à pied NaCL 9‰ Microscope optique Lame + lamelle Examen microscopique Lugol double à 1%

Examen microscopique NB: Pour les selles glaireuses, on prélève directement la glaire qu’on examine entre lame et lamelle.

Examen microscopique La préparation dans l’eau physiologique Mobilité de trophozoites de protozoaires et larves d'helminthes kystes de protozoaires Œufs d’helminthes.

Kystes d’Entamoeba coli et d’Endolimax nanus

Kystes de Pseudolimax butschlii

Kystes de Chilomastix mesnili

Œuf de Taenia

Œuf d’ Hymenolepis nana

Œuf de Fasciola hepatica

Œufs de Dicrocoelium dendriticum

Œuf de Schistosoma mansoni

Œuf de Schistosoma intercalatum

Œufs d’Ascaris lumbricoides

Œuf de Trichirus trichiura

Examen microscopique La préparation àl’iode les kystes d'amibes et de flagellés. Vacuole iodophile de Pseudolimax butshlii. Les noyaux des kystes (chromatine) en brun foncé.

Kyste d’Entamoeba coli

Kyste de Enndolimax nanus

Kyste de Giardia intestinalis

Kyste de Chilomastix mesnili