État des lieux des peuplements piscicoles d'eau douce de la région des Pays de la Loire Réunion d’avancement 22/03/2011.

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Transcription de la présentation:

État des lieux des peuplements piscicoles d'eau douce de la région des Pays de la Loire Réunion d’avancement 22/03/2011

Réunion d’avancement du 22/03/2011 Objectifs de ce matin : Avancement par rapport au calendrier Bilan sur les données acquises Test évaluation d’un taxon avec les données disponibles Fixer les objectifs pour la suite

Avancement par rapport au calendrier Projet mené sur 3 ans Année 1 (2010) Collecte des données par chaque département + valorisation informatique Agrégation régionale des données, réalisation des cartes de répartition, Année 2 (2011) application de la méthode UICN, évaluation des résultats par le groupe de suivi. Année 3 (2012) Validation des résultats par le groupe de travail, rédaction des fiches espèces et finalisation de l'atlas de répartition. Edition du rapport final.

Avancement par rapport au calendrier - Année 1 : Collecte, agrégation, réalisations cartes de travail Secteur Créateur de données Données collectées en interne Données traitées dans les tableurs Données envoyées à la FD44 Données compilées dans la base régionale Dep 44 Données FD OK En cours Autres sources OK+ données non intégrables au tableau Données frayères Dep 49 Données étude Loire, données frayères, hors protocole Dep 53 Manque données de BE, contextes piscicoles Dep 72 Manque données de BE (projet A28 entre autres + données hors protocoles) Dep 85 Manque données du parc poitevin, données écrevisses,vidéocomptage sèvre niortaise Données nationales AELB ONEMA-CSP Pêche pro Données études inter- departementales Assos migrateurs Pas de données IAV

Collecte des données : En retard Cartes de répartitions : En retard Avancement par rapport au calendrier - Année 1 : Collecte, agrégation, réalisations cartes de travail Bilan avancement Collecte des données : En retard Cartes de répartitions : En retard Proposition pour compenser le retard sur le calendrier Commencer l’analyse des espèces pour lesquelles, pas d’analyse liste rouge n’est prévue Lister ces espèces, identifier qui s’en occupe Commencer la rédaction des fiches espèces Lister ces espèces, trouver les bases biblio et demander droits aux auteurs identifier qui s’en occupe

Bilan sur les données acquises En chiffre : Toutes sources confondues 1200 stations (attention il y a des doublons 2000 opérations enter 1976 et 2010 18700 signalement d’espèces 65 espèces rencontrées en incluant les espèces exotiques anecdotiques 5 espèces représentent 1/3 des espèces 17 espèces représentent 75% des signalements t

Bilan sur les données acquises En chiffre : Pour les données FD (de 1981 à 2010 + quelques données 1978) ¾ des stations x opérations x entrées « espèce » Environs 9000 espèces rencontrées ONEMA-CSP (de 1981 à 2009 + quelques opé 2010) 255 stations opérations 9000 signalements d'espèce 50% des signalements d’espèces sur 250 stations suivies = données avec des chroniques intérressantes 1/5 des stations AELB (de 2008 à 2009) 48 stations 48 opérations 422 entrées « espèce » t

Bilan sur les données acquises Problèmes rencontrés : Pour les données FD La structure des tableurs n’a pas été toujours respectée et la nomenclature. Ne pas laisser trainer des espaces derrière des codes espèces !!! Un champ vide doit être renseigné par NR (non renseigné) pour les champs texte et -1 pour les champs numériques (éviter les signes < ou >) Pour les données dont les CPUE ou les tailles sont exprimées en classes remplacer les « <1 » par « 0.1 » et conserver la borne mini en tant que valeur. Quelques X,Y manquants Pour les données réseaux Des champs vides (type milieu, NTT etc.) Pour les données « études »

Bilan sur les données acquises La suite : Sébastien fait du contrôle qualité et consultera les départements en cas de soucis La base finale nettoyée sera renvoyée à chaque département. Sébastien intègrera les données manquantes qui devront être renvoyées à part.

Bilan sur les référentiels espèces et le choix des espèces à analyser Espèces analysable avec la méthode UICN Ide mélanote (Leuciscus idus) Lamproie de planer (Lampetra planeri) Lamproie de rivière (Lampetra fluviatilis) Lamproie marine (Petromyzon marinus) Loche de rivière (Cobitis taenia) Loche d'étang (Misgurnus fossilis) Loche franche (Nemacheilus barbatulus) Lote de rivière (Lota Iota) Mulet a grosses lèvres (Chelon labrosus) Mulet porc (Liza ramada) Mulet cabot (Mugil cephalus) Mulet doré (Liza aurata) Perche (Perça fluviatilis) Rotengle (Scardinius erythrophtalmus) Saumon atlantique (Salmo salar) Spirlin (Alburno_des bipunctatus) Tanche (Tinca tinca) Truite de mer (trutta trutta) Truite de rivière (trutta fario) Vairon (Phoxinus phoxinus) Vandoise (Leuciscus leuciscus) Ecrevisse a pieds blancs (Austropotamobius pallipes) Ecrevisse a pieds rouges (Astacus astacus) Crevette (Neomysis integer) Able de Heckel (Leucaspius delineatus) Ablette (Alburnus alburnus) Alose feinte (Alosa fallax fallax) Anguille (Anguilla anguilla) Barbeau fluviatile (Barbus barbus) Bouvière (Rhodeus amarus) Brème bordeliére (Blicca bjoerkna) Brème commune (Abramis brama) Brochet (Esox lucius) Carpe commune (Cyprinus carpio) Chabot (Cottus gobio) Chevaine (Leuciscus cephalus) Epinoche (Gasterosteus aculeatus) Epinochette (Pungitius pungitius) Esturgeon commun (Acipenser sturio) Flet (Platichthys flesus) Gambusie (Gambusia affinis) Gardon (Rutilus rutilus) Goujon (Gobio gobio) Grande alose (Alosa alosa) Grémille (Gymnocephalus cernua) Hotu (Chondrostoma nasus)

Bilan sur les référentiels espèces et le choix des espèces à analyser Espèces à étudier sans analyse UICN (introduites) Amour blanc (Ctenopharyngodo idella) Aspe (Aspius aspius) Black bass a grande bouche (Micropterus salmoides) Ombre commun (Thymallus thymallus) Perche soleil (Lepomis gibbosus) Poisson chat (Ictalurus mêlas) Pseudorasbora (Pseudorasbora parva) Silure glane (Silurus glanis) Truite arc-en-ciel (Onchorhynchus mikiss) Sandre (Stizostedion lucioperca) Carassin commun (Carassius carassius) Carassin doré ou argenté (Carassius auratus) Carpe sp. Saumon de fontaine (Salvelinus fontinalis) Crabe chinois (Eriocheir sinensis) Ecrevisse américaine (Orconectes limosus) Ecrevisse de Louisiane (Procambarus clarkii) Ecrevisse signal (Pacifastacus leniusculus) Ecrevisse a pieds grêles (Astacus leptodactylus) Espèces exotiques introduites ne se reproduisant pas : Tête de boule (Pimephales promelas) Tilapia (Tilapia sp) Gourami géant (Ophronemus goramy) Pyranaha

Bilan sur les référentiels espèces et le choix des espèces à analyser Espèces à écarter de l’analyse (non présentes ou estuariennes strictes) Alose feinte du Rhône (Alosa fallax rhodanensis) Anchois (Engraulis encrasicholus) Aphanius de Corse (Aphanius fasciatus) Aphanius d'Espagne (Aphanius iberus) Aphia (Aphia minuta) Apron (Zingel asper) Athérine de boyer (Atherina boyeri) Athérine prètre (Atherina presbyter) Bar (Dicentrarchus labrax) Bar moucheté (Dicentrarchus punctatus) Barbeau méridional (Barbus meridionalis) Black bass a petite bouche (Micropterus dolomieu) Blageon (Leuciscus (Telestes) soufia) Blennie (Blennius fluviatilis) Brème du Danube (Abramis sapa) Chabot du Lez (Cottus petiti) Congre (Conger conger) Corégone (Coregonus sp.) Crapet de roche (Ambloplites rupestris) Cristivomer (Salvelinus namaycush) Cyprinodonte de Valence (Valencia hispanica) Dorade (Sparus aurata) Eperlan (Osmerus eperlanus) Eperlan (Trispoterus minutus) Epirine lippu (Pachychilon pictus) Gardon italien (Rutilus rubilio) Gonelle (Pholis gunnellus) Hareng (Clupea harengus) Huchon (Hucho hucho) Lançon (Ammodytes sp.) Lieu jaune (Pollachius pollachius) Liparis (Liparis montagui) Maigre (Argyrosomus regius) Merlan (Merlangius merlangus) Motelle (Ciliata mustela) Omble chevalier (Salvelinus alpinus) Orphie (Belone belone) Pastenague (Dasyatis pastinaca) Plie (Pleuronectes platessa) Raie bouclée (Raja clavata) Sardine (Sardina pilchardus) Saumon chinook (Onchorhynchus tshawytscha) Saumon coho (Onchorhynchus kisutch) Sole (Solea solea) Sprat (Sprattus sprattus) Syngnathe (Syngnathus sp.) Tacaud (Trisopterus luscus) Torpille (Torpedo marmorata Risso) Toxostome (Chondrostoma toxostoma) Truite de Corse (trutta macrostigma) Truite de lac (trutta lacustris) Umbre pygmée (Umbra pygmaea) Vandoise rostrée (leuciscus burdigalensis) Vimbe (Vimba vimba) Vipère de mer (Nerophis lumbriciformis) Ecrevisse des torrents (Austropotamobius torrrentium)

Bilan sur les référentiels espèces et le choix des espèces à analyser Espèces pour lesquelles il faudra faire un choix quant à leur analyse Gobie fluviatile (Gobius fluviatilis) Gobie lote (Gobius lota) Gobie tâcheté (Potamoschistus microps) Gobie (Potamoschistus minutus) Gobie à nez tubulaire (Proterorhinus semilunaris) Gobie noir (Gobius niger) Gobie varié (Potamoschistus pictus) Lamproie (Lamproie sp) Espèces introduites accidentellement sans repro Espèces difficilement déterminables Codes espèces non pertinents Espèces dont les données sont inexistantes ou peu fiables

Bilan concernant les espèces Des petits détails à valider concernant le référentiel espèce Quelle toponymie pour certaines espèces? Gambusia affinis ou holbrooki Ictalurus mela ou Ameirus mela Acerina cernua ou gymnocephalus cernua (gambusie) Leuciscus idus ou idus idus Conserve t’on les taxons analysés au niveau national (Liste Rouge) ou traite t’on des genres (Atlas national)

Test d’évaluation LR d’un taxon avec les données disponibles Rappel de la méthode 5 critères permettent de définir la vulnérabilité d’un taxon : Une réduction de la population constatée, estimée, déduite ou supposée dans le passé et/ou le futur Une zone d’occupation et/ou d’occurrence réduite, fragmentée, fluctuante ou en diminution Une petite population en déclin Une population très réduite Une analyse quantitative mettant en évidence un risque d’extinction sur 10, 20 ou 100 ans Cette vulnérabilité comporte 3 niveaux : En danger Critique d’extinction (CR), en danger (EN), Vulnérable (VU) Chaque critère doit être évalué à travers une grille générique à toute les espèces. Concernant les poissons et crustacés, certains critères seront difficiles à tester.

Test d’évaluation LR d’un taxon avec les données disponibles Gagner du temps en écartant : les espèces éteintes => RE les espèces introduites => Non applicable les espèces très marginales => Non applicable les espèces non menacées => Non évaluées Evaluer les autres espèces : À l’aide de la grille de l’UICN à adapter à nos taxons et aux spécifictés d’habitat (linéaires de cours d’eau et BV) Cf => proposition à faire évoluer

Test d’évaluation LR d’un taxon avec les données disponibles Test avec un jeu de données provisoire CHABOT Cf carto répartition et base de données

Programmation de la suite du projet FDs : finir de transférer les données manquantes FDs : transférer cartos des contextes piscicoles FD44 : finir compil, rendre la base lisible, faire atlas de répartition de travail ? : commencer la rédaction des fiches Espèces (écologie, présentation en région) ? : organiser le travail en CP étendu, que propose t’on? Fixer date pour prochain CP étendu