Etude structurale de la Stromélysine-3, protéase impliquée dans l'invasion tumorale, complexée avec un inhibiteur phosphinique. A.L. GALL §, R. KANNAN ‡, I. STOLL ‡, M. RUFF §, V. DIVE *, A. YIOTAKIS ¶, M.C. RIO ‡, P. BASSET ‡ et D. MORAS §. §Laboratoire de Biologie Structurale et ‡Laboratoire de Recherches sur le Cancer du Sein, Institut de Biologie Moléculaire et Cellulaire (IGBMC), B.P. 163, 67404 Illkirch Cedex, France; *CEA, Département d'Ingénierie et d'Etudes des Protéines, CEA-Saclay, 91191 Gif/Yvette Cedex, France; ¶Department of Chemistry, Laboratory of Organic Chemistry, University of Athens, Panepistiomiopolis, Zografou, Athens, Greece. La Stromélysine-3, une cible thérapeutique. La Stromélysine-3 est une métalloprotéase matricielle (MMP-11) * décrite chez l'homme (hST3), la souris (mST3) et le xénope (xST3) * impliquée dans des processus physiologiques ou pathologiques où sont observées une prolifération intense et/ou une dégénérescence tissulaire (métamorphose des amphibiens, développement embryonnaire des mammifères, involution de la glande mammaire après lactation, cicatrisation de la peau, réparation osseuse ou carcinomes) * exprimée dans des cellules liées à des phénomènes d'invasion (implantation de l'embryon, morphogenèse osseuse et carcinomes invasifs) Figure 2: Alignement des séquences des domaines catalytiques de métalloprotéases matricielles (MMPs). st: stromélysine; mmp07: matrilysine; mmp12: élastase; mmp08: collagénase 2; mmp01: collagénase 1; mmp13: collagénase 3; mtmmp: MMP de type membranaire; m: souris; h: humain; x: xénope Figure 1: Expression de la ST3. A: Tissus normal du sein. B: Cancer du sein. La ST3 (coloration brune) est exprimée dans les cellules fibroblastiques du stroma, au voisinage immédiat des îlots de cellules cancéreuses. Dans un contexte de carcinome invasif, la ST3 est un marqueur de mauvais pronostic. A B Ilôt de cellules cancéreuses Stroma tumoral Expression, purification et caractérisation de la protéine recombinante. Figure 3: Protocole de purification. Culture Transformation de bactéries E. coli BL21 par choc thermique. Induction de l'expression de la stromélysine-3 par ajout d'IPTG. Lyse chimique et mécanique Sonication. Isolation des corps d'inclusion Centrifugation et lavages successifs. Solubilisation des corps d'inclusion Chromatographie échangeuse d'anions (Colonne Q-Sépharose) Elution de la protéine par gradient de NaCl et en présence de 6M urée. Renaturation/Repliement Elimination progressive de l'urée par dialyses. Elimination des aggrégats insolubles par ultracentrifugation. Concentration En présence d’un détergent doux (CHAPS). Figure 5: Purification de la forme recombinante. Gel de polyacrylamide (15%) dénaturant coloré au Bleu de Coomassie. Figure 4: Construction utilisée. Figure 6: Test d’activité de la Stromélysine-3. A: Principe du test. B: Résultats obtenus. (Kannan R. et al. (1999) Purification of active matrix metalloproteinase catalytic domains and its use for screening of specific stromelysin-3 inhibitors. Protein Expression and Purification 16: 76-83.) Cristallisation du complexe. Figure 7: Cristaux du complexe. A: Cristaux cubiques (environ 100µm de côté). B: Cristaux hexagonaux mâclés (300µmx100µmx70µm). C: Baguettes monocristallines (20µmx50µmx20µm). Ces cristaux ont permis l’enregistrement de données. C A B Figure 8: Modèle moléculaire du complexe Le complexe comporte deux atomes de zinc, un atome de calcium, une molécule d ’inhibiteur phosphinique et deux molécules de CHAPS. COOH NH2 CHAPS Inhibiteur phosphinique Ca2+ Zn2+