Les Cellules Souches Hématopoïétiques (CSH) Définition Fonctions et dévelopment CSH en thérapies Niche et motilité Isabelle Petit INSERM U898 (D. Aberdam) ipetit@unice.fr

Les différent types de cellules souches Prolifératives Lignées cellulaires Quiescentes, Faible nombre Accès difficile Culture difficile Difficiles à étudier

Facteurs de croissance: Auto-renouvellement Cellules souches multipotentes Progéniteurs: Cellules Précurseurs: cellules engagées différentiées quiescentes prolifératives CSH CD34+ CD19+ CD4+ CD8+ CD41+ CD33+ CD38+ (0.003%) Multipotence progéniteur commun myéloide progéniteur commun lymphoide Facteurs de croissance: EPO ,TPO, G-CSF, GM-CSF, etc…. myélocytes eosinophiliques granulocyte monocyte myélocytes basophiliques 6 min cellule T cellule B globules rouges mégakaryocytes eosinophiles monocytes/ macrophages neutrophiles basophiles 1013 cellules/jours plaquettes

Irradiée (faible dose) 1961-63: Till et McCulloch identifient les ”CFU-S”: 1ère évidence de cellules multipotentes CFU-S: Colony-forming unit-Spleen Irradiation létale Moelle osseuse 8-12 jours Nodules (Cellules érythroïdes, granulocytiques, macrophages…) (rate) (1) Différentiation (3) Auto-renouvellement (partiel) MAIS CFU-S ≠ CSH car ne donnent pas de lymphocytes Moelle osseuse Irradiée (faible dose) 8-12 jours Cassures ADN (2) Clonogénicité

Facteurs de croissance: Auto-renouvellement Cellules quiescentes CSH Cellules souches multipotentes CD34+ Multipotence CD34+ progéniteur commun myeloïde Cellules prolifératives CFU-S Progéniteurs: Cellules multipotentes progéniteur commun lymphoïde CFU-GEMM Facteurs de croissance: EPO ,TPO, G-CSF, GM-CSF, etc…. CFU-Meg Précurseurs: cellules engagées myélocytes eosinophiliques granulocyte monocyte myélocytes basophiliques CFU-E 6 min CD38+ CFU-GM Cellules différentiées cellule T cellule B globules rouges megakaryocytes eosinophiles monocytes/ macrophages CD41+ neutrophiles basophiles CD4+ CD8+ CD19+ CD33+ 1013 cellules/jours plaquettes

Méthodes expérimentales de caractérisation des CSH Difficultés: 1) Absence de marqueurs spécifiques 2) Différenciation spontanée et absence d’expansion des CSH in vitro Le facteur d’auto-renouvellement n’est pas connu CSH souris CSH homme CD34low/- Sca-1+ Thy1+/low CD38+ c-kit+ Lignage- (14 marqueurs de diff.) CD34+ Thy1+ CD38low/- c-kit-/low Lignage- (14 marqueurs de diff.)

3) Identification fonctionnelle a posteriori Detection des CFU: Colony forming unit

Test de reconstitution in vivo  Capacité à régénérer un système hématopoïétique complet à long-terme chez une souris irradiée Irradiation létale Survie (progéniteurs), Prise de greffe (% chimérisme) 2-5 mois 3) Transplantation en serie Seul test des CSH les plus pluripotentes!! Moelle osseuse/CSH

(Cellules souches endo/hémato) Dévelopment embryonnaire des CSH Succession de sites pour l’hématopoïèse: 1) Le sac vitellin (extra-embryonnaire) Hémangioblastes (Cellules souches endo/hémato) Ilôts sanguins Pas de CSH pluripotentes, érythrocytes primitifs, - ne participent pas à l’hématopoïèse adulte

2) La région aorte-gonade-mésonephros (AGM): 1er site des CSH CSH pluripotentes (faible nombre), Progéniteurs multipotents, pas de différenciation in situ - participent à l’hématopoïèse adulte 3) Le foie fetal: 1er site d’une hématopoïèse complete Colonization des CSH pluripotentes de l’AGM expansion des CSH (nombre définitif) différenciation importante Migration des cellules du foie vers: 4) Le thymus fétal 5) La rate fétale 6) La moelle osseuse fétale et adulte

Pas d’expansion des CSH Hématopoïèse adulte normale La division cellulaire des CSH Le dilemne des CSH: Division asymétrique: Pas d’expansion des CSH Hématopoïèse adulte normale Division symétrique: Modèle combinatoire: Expansion des CSH dans le foie fetal Reconstitution après dépletion (chimio…) Adaptation selon les besoins

Les “niches” des cellules souches: des environnements ultra-spécialisés Follicule pileux Moelle osseuse Crypte intestinale Shofield (1978): 1) Site anatomiquement défini 2) Maintien des fonctions des CSH 3) Inhibition de la différenciation 4) Contrôle nombre de CSH 5) Capacité de réversion (?)

La “niche” des CSH dans la moelle osseuse Endosteum (Ostéoblastes Ostéoclastes)

Les constituants de la “niche” des CSH 1) Les cellules Ostéoblastes (sécretent SDF-1, contrôlent le nombre de CSH…) Cellules stromales (ex: cellules réticulaires) Cellules endothéliales 2) Facteurs solubles: Cytokines, hormones etc….. 3) Matrice extracellulaire SDF-1/CXCR4

Différentes niches des CSH? Niche de quiescence Niche d’auto-renouvellement Niches fonctionnelles: Niche de quiescence, niche d’auto-renouvellement, niche de prolifération/différentiation? Niches anatomiques: Niche ostéoblastique et niche vasculaire? Niche d’auto-renouvellement

Plasticité des CSH: controverse scientifique Etudes préliminaires Artéfacts expérimentaux Fusion cellulaire Contamination sanguine Colonisation du tissus Transdifférentiation pas reconnue

Les CSH et thérapies cellulaires 1- les transplantations 1) Restorer une fonction chez des patients avec mutations génétiques: Cancers du système hématopoïétique (leucémies) Maladies génétiques (immunologiques, métaboliques)  Allogreffe 2) Conserver et re-injecter les CSH saines après traitement: Tumeurs solides, Lymphomes ou certaines leucémies  Autogreffe

Maladies non-malignes Maladies malignes • Aplasies médullaires (Fanconi) • Déficits immunitaires combinés sévères • Hémoglobinopathies • Déficit enzymatique (Gaucher) • Autres (ostéopétrose) • Leucémies aiguës myeloïdes et lymphoblastiques • Leucémies myéloïdes chroniques • Syndromes myélodisplasiques • Lymphomes, Myélomes, • Leucémie lymphoïde chronique • Syndromes myéloprolifératifs • Tumeurs solides Allogreffe • Maladies auto-immunes • Maladies génétiques+ thérapie génique • Myélomes • Lymphomes non-hodgkiniens • Maladie de Hodgkin • Tumeurs solides (cancer du sein, neuroblastomes...) Autogreffe

3 propriétés fondamentales des CSH/progéniteurs pour la réussite de la greffe: La pluripotence: Obtention de tous les types cellulaires hématopoiétiques 2) L’auto-renouvellement: Assure le maintien du système hématopoïétique reconstitué à long terme 3) La capacité de “homing” (domiciliation): Permet aux CSH de retourner dans la moelle osseuse après injection I.V. La présence des progéniteurs est importante pour la reconstitution à court-terme!

1ère évidence de cellules multipotentes CSH mobilisées par G-CSF 1961: Till et McCulloch: 1ère évidence de cellules multipotentes CSH mobilisées par G-CSF Eliane Gluckman, Paris E Donnall Thomas Alain Fisher, Paris CSH et thérapie génique Modèles expérimentaux Cellule souche leucémique

Sources de CSH en transplantations 1- Moelle osseuse (ponction sous anesthésie générale: 500-1200ml) 2- Sang périphérique par cytaphérèse (Cellules CD34+ mobilisées avec G-CSF: 0.05%  5%) 3- Sang de cordon ombilical Registre France Greffe de Moelle http://www.dondemoelleosseuse.fr

Etapes de la transplantation de CSH 1- Conditionnement (irradiation, chimio) Collecte des CSH du donneur (allogreffe) 2- Transfusion veineuse des CSH “Homing” vers la moelle osseuse 3- Traitement adjuvant Transfusion globules rouges, plaquettes Immunosuppression Antibiotiques, G-CSF Stockage des CSH du donneur “purge” éventuelle (autogreffe) 4- Reconstitutions hématologique (12 à 30 jours) et immunologique (1 an)

Les CSH et thérapies cellulaires 2- Réparation cardiaque (essais cliniques 2005- ) • Injectées au niveau de la lésion cardiaque après infarctus • Les CSH agissent en activant l’angiogénèse • Efficacité pas encore démontrée CSH et thérapies géniques (essais cliniques 2000- )  Culture des CSH in vitro (cytokines) et transfert de gène (virus) Immunodéficiences (ADA-SCID, X linked-SCID, X linked-CGD) Maladies métaboliques Résultats: Bonne correction, Cellules T fonctionnelles MAIS: 4/10 enfants (Fisher, Paris) et 1/10 (Londres) ont développé des leucémies (LMO2) 1h

Migration/Trafficking des cellules CSH Situations physiologiques Mécanismes moléculaires Procédures médicales Homing / prise de greffe Greffe de CSH Très faible recirculation permanente à l’état normal (0.01% CD34+ dans le sang) sang moelle osseuse but?? Mobilisation Collecte de CSH (G-CSF)

La chimiokine SDF-1 régule le homing des CSH cellule Mouvement Gradient de chimiokine SDF-1 CXCR4 (Chimiokines: cytokines chimioattractantes) La chimiokine SDF-1 régule le homing des CSH Cellules CD34+ Anti-SDF-1 Souris NOD/SCID Cellules CD34+ CD34 Anti-CD34 (CTL) CXCR4 Cellules CD34+ Anti-CXCR4 CFU-GM CFU-E CFU-GEMM moelle Test de détection des colonies humaines in vitro

Mécanisme de mobilisation des CSH?? 10 min Mécanisme de mobilisation des CSH??

G-CSF induit une réduction de SDF-1 dans la moelle osseuse Moelle osseuse (homme) Moelle osseuse (Souris) CTL SDF-1 20 4 15 3 CFC-C dans le sang (x103/ml) ( ) SDF-1 (ng/ml) ( ) 10 * 2 5 1 * * G-CSF CTL 1 jr 5 jrs G-CSF

Protéases neutrophiliques G-CSF Système nerveux Activation des ostéoclastes Protéases neutrophiliques Protéases ARNm SDF-1 protéine SDF-1 protéine SDF-1 Inhibition des ostéoblastes Diminution de SDF-1 dans la moelle osseuse Mobilisation des CSH/progéniteurs

Stratégies actuelles pour améliorer les transplantations Expansion du greffon Cytokines, Facteurs de croissance Sang Mobilisation GM-CSF AMD3100 (inhibiteur de CXCR4) Homing Expression de CXCR4 Inhibition de CD26 (qui dégrade SDF-1) Moelle osseuse Retention, Auto-renouvellement Activer signaux de la niche: parathormone (augmente ostéoblastes) Niche des CSH

Sympathéctomie avec 6 OHDA Nature, 2008 Sympathéctomie avec 6 OHDA (hydroxydopamine): Les CSH sont mobilisées le jour: Souris CTL SDF-1 CSH Souris + 6 OHDA lumière

Relation mobilisation et remodelage osseux 1) Lumière active gènes horloge: noradrenaline secrétée 2) Dégradation de Sp1 dans la moelle 3) Arrêt transcriptionnel de SDF-1 (CXCL12) dans la moelle 4) Mobilisation des cellules CSH 20 min

Les cellules souches pluripotentes iPS Reprogrammation Induced pluripotent stem cells 1h45 Avantages: Cellules différentiées évite pb éthique hES autologues Problèmes à résoudre pour la thérapie: Utilisation de virus Protocoles de différenciation

Thérapie génique à partir de cellules iPS 2/2 2/2S A/T HbA HbSS Science, nov 2007 (1) Obtention de cellules iPS autologues (2) Correction du gène muté (recombinaison homologue) (3) Différenciation en cellules CSH (4) Transplantation des cellules CSH Gène muté Gène sain c-myc LoxP