NEMATHODE C.ELEGANS.

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1 NEMATHODE C.ELEGANS

2 Z2 Z3 Zygote AB P1 EMS MS E C D P2 P3 P4
Fig 1:Carte de lignage cellulaire de C. elegans. Chaque ligne verticale représente une division cellulaire et les lignes horizontales montrent les deux cellules produites; ex: la 1ère division cellulaire crée 2 nouvelles cellules à partir du zygote, AB et P1. Les cellules de cette carte se réfèrent à celles présentes dans la larve de 1er stade L1. Au cours des stades larvaires successifs, les divisions cellulaires suivantes produiront les 959 cellules somatiques qui composent le ver adulte hermaphrodite Z2 Z3 Hypoderme Neurones Muscles du pharynx Muscles du corps Glandes Cellules germinales Zygote AB P1 EMS MS E C D P2 P3 P4 Intestin Deux neurones

3 Fig 2: Anatomie d’un nématode adulte
Pharynx Système nerveux Intestin Vulve Zygote Rectum Anus Utérus Ovaire Cuticule oocytes

4 Z1. ppp Z4. aaa signal récepteur (a) Z1.ppp (b) Pendant le stade L2, les 2 cellules commencent à secréter le signal pour la détermination de l’utérus Devient une cellule ancre Devient une cellule précurseur de l’utérus ventral Fig 3: Interactions cellule-cellule dans la détermination de la cellule ancre

5 La cellule ancre sécrète la protéine LIN-3
Gonade Hypoderme Muv activé P3.p P4.p P5.p P6.p P7.p P8.p Cellule ancre La cellule ancre sécrète la protéine LIN-3 Signal inhibiteur Vul activé Lin-12 activé Voie tertiaire Voie secondaire Voie primaire Vulve Fig 4: Détermination du lignage cellulaire dans la formation de la vulve chez C.elegans Cellules précurseurs de la vulve (Pn.p)

6 Figure 5. La position du fuseau mitotique détermine la taille relative et la relation spatiale entre cellules filles. Cercles noirs: pôles du fuseau; lignes violet foncé: microtubules du fuseau et microtubules astraux; ovales violet clair: chromosomes; cercles oranges : noyau ; ligne discontinue bleu foncé: sillon de clivage; ovales rouge: jonctions serrées des cellules épithéliales; ronds jaunes: facteurs développementaux. A. Un fuseau localisé au centre de la cellule mère produit deux cellules filles de taille identique (à gauche), tandis qu’un fuseau excentré produit deux cellules filles de taille différente (à droite). B. Un fuseau orienté parallèlement au plan épithélial conduit les deux cellules filles à demeurer dans l’épithélium (à gauche), tandis qu’un fuseau orienté perpendiculairement à ce plan conduit une des deux cellules filles à quitter l’épithélium (à droite). La position du fuseau mitotique détermine également la distribution de facteurs développementaux dans les cellules filles. Par exemple, des facteurs présents du côté basal de la cellule mère (B) seront répartis dans les deux cellules filles si le fuseau est orienté parallèlement à l’épithélium (à gauche), ou ne seront hérités que par l’une des deux cellules filles si le fuseau est orienté perpendiculairement à l’épithélium (à droite)

7 Figure 6. La distribution polarisée de certaines protéines PAR est conservée au cours de l’évolution des organismes multicellulaires. Symboles similaires à ceux de la Figure 1. A. Zygote de C. elegans juste après la métaphase. PAR-3 (jaune) est localisé dans le cortex antérieur, tandis que PAR-1 (vert foncé) est localisé dans le cortex postérieur. Les vecteurs de force tirant sur les pôles du fuseau mitotique sont représentés en rouge, le vecteur postérieur étant supérieur au vecteurantérieur. B. Cellule épithéliale de mammifère en mitose. ASIP, l’homologue de PAR-3 (jaune), est localisé au niveau des jonctions serrées situées du côté apical (sommet; contraire de basal) de la cellule, tandis qu’un homologue de PAR-1 (vert foncé) est localisé sous la membrane baso-latérale (sur le côté).

8 Figure 7. Séquence du processus de division cellulaire chez le zygote de C. elegans. Images issues d’une séquence de vidéo-microscopie conduite sur un embryon transgénique exprimant l’histone H2B fusionnée à la GFP (green fluorescent protein), ce qui permet la visualisation de l’ADN (fluorescence verte). L’embryon mesure environ 50 µm de long; son pôle antérieur est situé à gauche, son pôle postérieur à droite. Le temps écoulé est indiqué en minutes et en secondes; le temps 0 correspond à 30 minutes environ après la fécondation. Les flèches indiquent la position des centrosomes(C), puis des pôles du fuseau mitotique (D). A.Le pronoyau femelle (à gauche) et le pronoyau mâle (à droite) sont visibles. B. Le pronoyau femelle migre vers le pronoyau mâle, qui lui même s’éloigne du pôle postérieur et les pronoyaux se rencontrent. C. Les deux centrosomes entreprennent une rotation de 90° qui les repositionne le long de l’axe antéro-postérieur. Le fuseau se met en place au centre de la cellule. D. Le fuseau se déplace vers le pôle postérieur durant l’anaphase. E. Ce déplacement conduit à une division asymétrique qui scinde le zygote en un grand blastomère antérieur et un petit blastomère postérieur. Il faut noter que chacun de ces processus de division cellulaire peut être affecté chez des mutants ou par l’inactivation de gènes par interférence par l’ARN. A B D E C

9 Figure 8. Mutations affectant la division du zygote de C. elegans. A
Figure 8. Mutations affectant la division du zygote de C. elegans. A. Embryon sauvage. B. Mutant par-3. C. Mutant zyg-8. Alors que le zygote se divise de façon asymétrique dans la souche sauvage, engendrant un blastomère antérieur légèrement plus grand que le blastomère postérieur (A), le zygote se divise de manière symétrique dans le mutant par-3, engendrant deux blastomères de taille identique (B). Dans le mutant zyg-8, le fuseau mitotique est éxagérément déplacé vers le pôle postérieur, engendrant une première division aberrante (C).

10 A B C D Figure 9. Mutants affectant la duplication du centrosome et la cytocinèse. A, B.Immunofluorescence d’embryons en mitose de la souche sauvage (A) ou du mutant sas-1 (spindle assembly) en utilisant des anticorps contre la tubulineα(vert) et contre ZYG-9 (marqué en rouge, mais apparaissant en jaune en raison de la superposition avec le vert), un constituant du centrosome. Noter que deux centrosomes sont présents à ce stade dans l’embryon sauvage, mais un seul chez le mutant (images fournies par Marie Delattre). C, D. Images de microscopie à contraste de phase d’un embryon sauvage (C) ou d’un mutant cyk-1 (D) peu de temps après la cytocinèse du zygote. Noter que les deux noyaux filles (deux flèches vers la droite) se retrouvent dans le même cytoplasme chez le mutant après la régression du sillon de clivage. De plus, un troisième noyau est visible (flèche vers la gauche), provenant de la régression du sillon de clivage du second globule polaire

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12 LA DROSOPHILE

13 Fig 1: Le cycle de vie de la drosophile

14 Fig 2 : Stades précoces du développement embryonnaire de la drosophile

15 Fig 2 (suite) : Stades précoces du développement embryonnaire de la drosophile

16 Fig 3: Segmentation chez la drosophile

17 Fig 4: Les disques imaginaux de la larve de drosophile et les structures adultes qui en dérivent
Antenne Oeil Patte Haltère Aile Appareil génital Glande salivaire

18 Gènes gap Gènes pair-rule Gènes de polarité segmentaire Krüppel hairy engrailed knirps even-skipped wingless hunchback runt cubitus interruptus giant fushi-tarazu hedgehog tailless odd-paired fused huckebein odd-skipped armadillo sloppy-paired patched gooseberry paired naked disheveled Tableau 1: Les gènes de segmentation chez la drosophile

19 Fig 5: Schéma général de la mise en place de l’axe antéro-postérieur
Gradients antéro-postérieurs formés par les produits des gènes à effet maternel (b) Les gènes zygotiques gap divisent l’embryon en large régions (c) Les gènes zygotiques pair-rule divisent l’embryon en bandes d’environ 2 segments de large (d) Les gènes zygotiques de polarité segmentaire divisent les segments en moitiés antérieure et postérieure (e) Les gènes sélecteurs homéotiques spécifient l’identité de chaque segment Fig 5: Schéma général de la mise en place de l’axe antéro-postérieur

20 hunchback giant Krüppel knirps tailless Fig 6: Expression des gènes gap dans l’embryon

21 A) B) (A) (B) (C) (D) (E) Fig 7: Le profil d’expression en bande d’un gène pair-rule dans l’embryon de drosophile

22 Fig 8: Expression des gènes de polarité segmentaire
parasegment Initiation pour la production des gènes pair-rule: Antérieur Postérieur Cellules:

23 Fig 9: La mutation Antennapedia (Antp) chez la drosophile
(a): Tête d’une drosophile sauvage montrant les antennes et les autres parties de la tête. (b):Tête d’un mutant Antp montrant le remplacement des structures d’antennes normales par des pattes. Ceci est dû à l’activation du gène Antp dans la région de la tête (a) (b)

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