Croissance des Microorganismes en Laboratoire Milieux de Croissance

Buts Croissance sous des conditions contrôlées Maintien Isolation de cultures pures Évaluer la présence et le nombre de microorganismes

Types Liquides (bouillons) Milieux Solides Permets la culture en suspension Distribution uniforme des éléments nutritifs, environnementaux et autres Permets la croissance de grands volumes Milieux Solides Mêmes que milieux liquides + agent de solidification L’agar : Polysaccharide dérivé d’une algue

La Croissance en Bouillon Non-inoculé Limpide Turbide + sédiment Turbide Limpide + sédiment

Croissance sur Gélose Croissance sur surface solide Croissance isolée Permets l’isolation de colonies simples Permets l’isolation de cultures pures Colonie simple

Milieux Solides (suite) Pente Croissance en surface et en profondeur Différentes disponibilités d’oxygène Entreposage à long terme Tube profond Milieu semi-solide Entreposage à long terme Faible disponibilité d’oxygène

Compter les Microorganismes

Méthodes Mesure de turbidité Comptes viables Nombre le plus probable Comptes directs

Mesure de la Turbidité  Mesure la quantité de lumière qui peut traverser un échantillon Le moins de lumière qui traverse l’échantillon le plus dense est la population Mesure la densité optique ou le pourcentage de transmission

Mesure de la Turbidité Spectrophotomètre (A600): Mesure de la Densité Optique Lumière 600nm Détecteur….lecture Lecture différente

Relation inverse 2.0 1.0 D.O. 600nm % Transmission 100 50 2.0 1.0 D.O. 600nm % Transmission 100 50 Densité cellulaire Relation inverse

Comptes Directes L’échantillon à être énuméré est appliqué sur une lame d’hématimètre qui retient un volume fixe dans une cellule de comptage Le nombre de cellules est compté Le nombre de cellules dans le volume donné est déterminé

Hématimètre Cette lame possède 2 cellules de comptage indépendante

Déterminer le Compte Direct Compter le nombre de cellules dans trois carrés indépendants 8, 8 et 5 Déterminer la moyenne (8 + 8 + 5)/3 =7 Donc 7 cellules/carré

Déterminer le Compte Direct (suite) 1mm Profondeur: 0.1mm 1mm Calculer le volume d’un carré: = 0.1cm X 0.1cm X 0.01cm= 1 X 10-4cm3 ou ml Diviser le nombre moyen de cellules par le volume d’un carré Donc 7/ 1 X 10-4 ml = 7 X 104 cellules/ml

Avantages: Désavantages: Rapide Aucune croissance requise Aucune information a propos de l’organisme est requise Désavantages: Ne discrimine pas entre vivant et mort Peux être difficile de discriminer entre les bactéries et les détritus

Problème Un échantillon est appliqué à une lame d’hématimètre dont les cellules de comptage ont les dimensions suivantes: 0.1mm X 0.1mm X 0.02mm et qui possèdent 100 carrés. Des comptes de 6, 4 et 2 cellules ont été faits dans trois carrés indépendants. Quel est le volume d’une cellule de comptage? Quel est le volume d’un carré? Quel est le nombre de cellules par millilitre dans l’échantillon?

Comptes Viables Cellule viable: une cellule capable de se diviser et de générer une population (ou colonie) Un compte viable est fait en diluant l’échantillon original Étaler des échantillons des dilutions sur un milieu de culture approprié Incuber sous les conditions appropriées pour permettre la croissance Des colonies sont formées Les colonies sont comptées et le nombre original de cellules viables est déterminé en fonction de la dilution

Dilution d’un Échantillon de Bactéries

Dilution d’un Échantillon de Bactéries

Dilution d’un Échantillon de Bactéries

Dilution d’un Échantillon de Bactéries

Dilution d’un Échantillon de Bactéries 5672 57 4

Comptes Viables  Le nombre total de cellules viables est indiqué en tant qu’Unité Formatrice de Colonies (UFC) plutôt que nombre de cellule Chaque colonie est originaire d’une unité formatrice de colonie (UFC) Une plaque avec 30-300 colonies est choisie Calcul: Nombre de colonies sur la plaque X la réciproque de la dilution (facteur de dilution)= Nombre d’UFC/mL Ex. 57 UFC X 106 = 5.7 X 107 UFC/mL

Compte Viable Avantages: Désavantages: Dénombre les microorganismes viables Peut distinguer différents microorganismes Désavantages: Pas de milieu universel Nécessite la croissance du microorganisme Seule les cellules vivantes génèrent des colonies Des amas ou des chaînes de cellules génèrent une seule colonie UFC  une bactérie Ex. Un UFC de Streptococcus  un UFC d’E.coli

Nombre le Plus probable: NPP Fondé sur les statistiques de probabilités Test présomptif fondé sur des caractéristiques données Technique en bouillon

Nombre le Plus Probable (NPP) Commencer avec un bouillon qui permet de déceler les caractéristiques désirées Inoculer differentes dilutions de l’échantillon à être testé dans chacun de 3 tubes -1 -2 -3 -4 -5 -6 Dilution 3 Tubes/Dilution 1 ml de chaque dilution dans chaque tube Après une période d’incubation approprié, enregistrer les TUBES POSITIFS (qui ont de la CROISSANCE et les caractéristiques désirées)

NPP- Suite L’objectif est de DILUÉ l’organisme à zero Après l’incubation, le nombre de tubes qui démontre les caractéristiques désirées sont enregistré Exemple de résultats pour une suspension de 1g/10 ml de terre Dilutions: -1 -2 -3 -4 Tubes positifs: 3 2 1 0 Choisir la bonne suite: 321 et la retrouver dans le tableau Multiplier le résultat par le facteur de dilution central 150 X 102 = 1.5 X 104/mL Puisque vous avez 1g dans 10mL doit multiplier encore par 10 1.5 X 105/g

Visualiser les Microorganismes Microscopie - Les Colorations

Colorations Simples Coloration positive Colorations négatives Coloration du spécimen Coloration indépendante de l’espèce Colorations négatives Coloration de l’environnement de fond

Méthode Coloration simple: Un seul agent de coloration Permet de déterminer la taille, la forme, et l’arrangement des cellules

Les Formes Cellulaires Coccus: Sphères Division sur 1,2 ou 3 plans Nombre de plans de division donne différents arrangements Arrangements typiques de différents genres bactériens

Les Cocci (Coccus) Plans de division Arrangements Diplococcus Streptococcus (4-20) Tétrade Staphylococcus Indice: si le nom du genre de bactéria finisse par coccus, la forme de la bactérie est cocci

Les Formes Cellulaires (suite) Bacilles: Bâtonnets Division sur 1 plan seulement Arrangements typiques de différents genres bactériens

Les Bacilles Plans de division Arrangements Diplobacille Streptobacille Eg. Clostridium = bacille Indice: si le nom du genre de bactérie finisse par bacille, la forme de la bactérie est bacille Si elle ne finisse pas par cocci, c’est probablement une bacille.

Coloration différentielle Coloration de Gram Divise les bactéries en deux groupes Gram Négatives & Gram Positives

Gram Positives Colorées Mauves Bacille Coccus Genres: Bacillus et Clostridium Coccus Genres: Streptococcus, Staphylococcus et Micrococcus

Gram Négatives Colorées Rouges Bacille: Coccus: Genres: Escherichia, Salmonella, Proteus, etc. Coccus: Genres: Neisseria, Moraxella et Acinetobacter

Règles Si le nom est bacillus et/ou clostridium = Gram (+), bacille Si le nom finisse par coccus ou cocci (autre que les 3 exceptions, qui eux sont Gram (-)) = forme de coccus et Gram (+) Si ça fait pas partie des règles ci-dessus, = Gram (-) bacilles

Paroi Cellulaire Gram + Vs Gram - Paroi Peptidoglycane Membrane Couche de Lipopolysaccharide Absente Paroi Peptidoglycane Membrane Plasmique

Méthode - Coloration Primaire + Coloration avec le cristal violet Ajout d’iode de Gram (Mordant) + + Paroi :peptidoglycane LPS - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - Membrane plasmique Gram positif Gram Négatif

Méthode - Étape Différentielle Lavage à alcool Paroi est déshydratée – Complex colorant + iode est piégé Paroi n’est pas déshydratée – Complex n’est pas piégé Paroi :peptidoglycane LPS - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - Membrane plasmique + + Gram positif Gram Négatif

Méthode - Contre Coloration + Coloration avec la Safranine + + Paroi :peptidoglycane LPS - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - Membrane plasmique + Gram positif Gram Négatif

Sommaire Fixation Coloration primaire Violet de cristal Lavage Décoloration Contre coloration Safranine

Coloration Acido-Alcoolo-Résistante Coloration diagnostique de Mycobactérium Pathogènes de la Tuberculose et de la Lèpre Paroi cellulaire avec acide mycoïque Cireuse, très imperméable

Méthode Principe: Contenu élevé de composés similaires aux cires dans la paroi cellulaire, Acide Mycoïque, rend ces bactéries très résistantes aux colorants

Méthode (Suite) La paroi est rendue perméable par la chaleur Coloration avec de la fuchsine basique À base de phénol, soluble dans la couche mycoique Refroidissement retourne la paroi à son état imperméable Colorant est piégé Lavage avec de l’alcool acide Étape différentielle Mycobactéries retiennent le colorant Autres bactéries perdent le colorant

Coloration de Spores Spores: Cellule bactérienne différentiée Résistante à la chaleur, la déshydratation, les ultraviolets, et différents traitements chimiques Alors, très résistante aux colorant aussi! Typique des bacilles Gram positifs Genres Bacillus et Clostridium Conditions défavorables induisent la sporogénèse Différenciation de cellule végétative à l’endospore E.g. Anthrax

Coloration au Vert de Malachite Spores (structures résistantes utilisées pour la survie dans des conditions défavorables) Sporangium (strucutre dans laquelle les spores se forment) Endospore (dormant, non reproductrices) Cellules végétatives (en croissance active) Perméabilisation des spores par la chaleur Coloration primaire au vert de malachite Lavage Contre coloration à la safranine