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Insuffisances ovariennes prématurées (IOP)
Pr Sophie Christin-Maitre Endocrinologie de la reproduction Hôpital Saint-Antoine Centre de maladies endocriniennes rares CMERC Université Pierre et Marie Curie, EA 1533 Paris
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Insuffisance ovarienne prématurée (IOP)
Aménorrhée primaire ou aménorrhée secondaire de plus de 6 mois Avant l’âge de 40 ans Gonadotrophines FSH> 40 mUI/ml
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NOMBRE DE FOLLICULES PRIMORDIAUX
5ème mois intra-utero 37 50 ans
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Perte folliculaire physiologique
Gougeon, Ecochard, Thalabard 1994 Biol Reprod
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Faddy 2000 Mol Cell Endocrinol 163; 43-8
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Age de survenue de la ménopause
(Torgerson, 1997) > 45 ans : 88% femmes : 9,7% < : 1,9%
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Le risque de ménopause avant 40 ans
Pas de liaison satistiquement significative avec : âge de la ménarche utilisation de contraception orale le tabagisme l’éducation BJOG, 2003; 110 : 59-63
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Insuffisance ovarienne prématurée (IOP) :
Etiologie inconnue dans plus de 90% des cas en dehors de la chimiothérapie, de la radiothérapie et de la chirurgie
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Insuffisance ovarienne prématurée (IOP) :
Origine génétique ?
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Gènes et ménopause physiologique
Pythagore ( av. J.C) nubilité âge critique puberté 14 7 ans ans perte de la faculté de concevoir
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Gènes et ménopause physiologique
Corrélation entre l’âge de survenue de la ménopause entre mère et fille Cramer, Fertil Steril 1995 ; 64: 740 Etude de cohorte de jumelles en GB: 628 paires, origine génétique 63% Snieder, J Clin Endocrinol Metab 1998; 83: 1875
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2004 : 1ère étude du génome Etude de familles hollandaises avec des femmes ayant un âge de ménopause très discordant ou très concordant 165 familles Van Asselt KM Am J Hum Genet 2004; 74: 444
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Van Asselt KM Am J Hum Genet 2004; 74: 444
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Liaison : Xp21.3 +++ LOD score 3,1 9q21.3 LOD score 2,6
=> X CHROMOSOME Van Asselt KM Am J Hum Genet 2004; 74: 444
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dans 5 à 20% des cas selon les différentes études
Cas familiaux d’IOP dans 5 à 20% des cas selon les différentes études
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Identification d’anomalies génétiques chez des femmes avec IOP
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MECANISMES DE L’IOP Atrésie > 120 71 14 jours ?? Préovulatoire
Antraux Préantraux Secondaires Primaires Atrésie Primordiaux > 120 71 14 jours ??
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MECANISMES DE L’IOP Atrésie > 120 71 14 jours ?? Préovulatoire
Antraux Préantraux Secondaires Primaires Atrésie Primordiaux > 120 71 14 jours ??
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MECANISMES DE L’IOP > 120 71 14 jours ?? Préovulatoire Antraux
Préantraux Secondaires Primaires Primordiaux > 120 71 14 jours ??
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MECANISMES DE L’IOP Atrésie > 120 71 14 jours ?? Préovulatoire
Antraux Préantraux Secondaires Primaires Atrésie Primordiaux > 120 71 14 jours ??
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3 exemples à partir de modèles animaux
Kit ligand connexine 37 Nobox
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Diminution du pool de follicules primordiaux
kit-ligand et son récepteur c-kit
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Kit ligand (KL) et c-kit
Sl Steel : mutation kit ligand W White spotting : mutation c-kit Anémie, anomalie de développement des mélanocytes Diminution du taux de cellules germinales Cell 1990; 63: 213
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Kit ligand (KL) et c-kit
Sl Steel : mutation kit ligand W White spotting : mutation c-kit KL agit après liaison à c-kit sur les cellules germinales primordiales pour stimuler leur mitose
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KIT gene Gène humain chromosome 4q12
Mutation dans le cadre de piébaldisme IOP n=42 Pas de mutation Shibanuma BMC Women’s health 2002; 2: 8
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Modèle des souris invalidées pour la connexine 37
= ovocytes arrêt entourés d’une seule couche de cellules de la granulosa Simon, Nature 1997; 385: 525 => ROLE DES FACTEURS OVOCYTAIRES DANS LA PROLIFERATION DES CELLULES DE LA GRANULOSA
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Exemple d’un gène exclusivement ovocytaire : NOBOX
Newborn Ovary Homeobox gene In silico, trancripts de l’ovaire de rat nouveau-né Rajkovic A, Science 2004; 305: 1157
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Newborn Ovary Homeobox gene = souris invalidées Nobox
Ovaires atrophiques Sans ovocytes Perte ovocytaire après la naissance, disparition à J14 Rajkovic A, Science 2004; 305: 1157
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2 ème mécanisme des IOPs
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MECANISMES DE L’IOP > 120 71 14 jours ?? Préovulatoire Antraux
Préantraux Secondaires Primaires Primordiaux > 120 71 14 jours ??
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Blocage de la maturation folliculaire
GDF9 GDF9B ou BMP15 RFSH FOXL2
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GDF9 Growth differenciation factor 9 membre de la famille du TGF
exprimé dans l ’ovocyte
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souris invalidées pour GDF9 : ovaires petits
blocage de la maturation au stade de follicule primaire, une couche (3b) Dong Nature 1996; 383: 531 Elvin Mol Endocrinol 1999; 13 :1018
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Elvin Mol Endocrinol 1999; 13 :1018
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Elvin Mol Endo 1999 13 : 1018
37
GDF9 souris invalidées GDF9 : anomalie ovocytaire :
croissance plus rapide de l ’ovocyte, augmentation de volume de 70% par rapport aux ovocytes contrôles Carabatsos Dev Biol 1998; 203 : 373
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TT 5 jours 10 jours Vitt J Clin Endocrinol Metab 2000; 141: 3814
Small preantral Large preantral Vitt J Clin Endocrinol Metab 2000; 141: 3814
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N=203 Menarche 9,5 Regular menstrual cycles 21 days Amenorrhea 33 FSH = 104 mUI/L Biopsy : absence of follicles EJE 2006, 154: 1-7
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GDF9B GDF9B ou BMP15 brebis Inverdale : 177 sur 3 générations
Galloway, Nat Genet 2000; 25 : Shimasaki S Endocr Rev 2004; 25 : 72
42
GDF9B brebis Inverdale : 177 sur 3 générations Mutation ponctuelle
Hétérozygotes : portée double ou triple Homozygotes : IOP Galloway, Nat Genet 2000; 25 :
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développement pubertaire Ovaires en bandelette
2 sœurs avec une IOP Absence de développement pubertaire Ovaires en bandelette Di Pasquale Am J Hum Genet 2004; 75
44
Di Pasquale Am J Hum Genet 2004; 75 :
45
N= 203 POF patients SA Laissue P, EJE 2006, 154: 1-7
46
BMP15
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Rôles de BMP15
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Blocage de la maturation folliculaire
GDF9 BMP15 RFSH FOXL2
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Blocage de la maturation folliculaire
Familles d’aménorrhée primaire Nord de la Finlande Effet fondateur Etudes de liaison : chromosome 2p Aittomaki K, Cell 1995; 82: 959
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Doherty, J Clin Endocrinol Metab 2002; 87: 1151
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Biopsie ovarienne des patientes avec RFSH muté
Aittomäki K 1996 J Clin Endocrinol Metab 81: 3722
53
G Méduri J Clin Endocrinol Metab 2003; 88 : 3491
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FSH dépendant FSH indépendant 14 jours ?? > 120 71 Préovulatoire
Antraux FSH dépendant Préantraux Secondaires Atrésie Primaires Primordiaux FSH indépendant 14 jours ?? > 120 71
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Blocage de la maturation folliculaire
GDF9 BMP15 RFSH FOXL2
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Syndrome de blépharophimose
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Syndrome de blépharophimose
Autosomique dominant Type I BPES : Anomalies oculaires et infertilité uniquement féminine avec résistance à la stimulation par les gonadotrophines ( Type II pas de trouble de la fertilité) Chromosome 3q22-23
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BPES blepharophimosis ptosis epicanthus inversus telecanthus
Small et al., Hum Mol Genet, 1996. blepharophimosis ptosis epicanthus inversus telecanthus
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BALANCED TRANSLOCATION
translocation patient t(3;4) (q23; p15.2) Fukushima et al., Am J Med Genet, 1991.
60
BPES AND FOXL2 Crisponi et al., Nature Genetics, 2001. identification of causal BPES gene FOXL2 by Crisponi et al. (2001) forkhead transcription factor family
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FOXL2: MUTATIONAL HOTSPOTS
nucleotide position ATG TGA 238 391 693 898 939 1368 2745 1 52 152 221 234 376 amino acid position current study Ramirez-Castro et al. 2002 Kosaki et al. 2002 13 % Yamada et al. 2001 De Baere et al. 2001 30 % Crisponi et al. 2001
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GENOTYPE-PHENOTYPE CORRELATION
predicted truncated proteins BPES type I : POF De Baere et al., Hum Mol Genet, 2001. 486C>G 404delC insC delATC 887C>T dup8 delCA 892C>T del23 insT nucleotide change wild type F F1 S BPES type
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Syndrome de blépharophimose
Gène FOXL2 Facteur de transcription pouvant interagir avec les membres de la famille du TGF Crisponi L, Nature Genet 2001; 27 : 159
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Expression ovarienne de FOXL2 chez la femme
Follicule mature cellules folliculaires A 40 semaines de développement A l ’âge adulte pendant le développement et à l’âge adulte pas d’expression dans les cellules germinales pas d ’expression détectée dans les testicules Cocquet et al., 2002
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Generation of a Foxl2lacZ allele by homologous recombination.
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Eyelid anomalies. (Uda et al)
Defects are apparent in 13.5 dpc Foxl2-/- embryos (B) by histology with hematoxylineosin staining, correlated with overt eyelid hypoplasia and open eyes at 17.5 dpc (D) and birth (F) compared to wild-type animals (A, C, and E).
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Histologie des ovaires des souris sauvages et Foxl2lacZ homozygous
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Foxl2-/- activinbA AMH GDF-9 KitL Foxl2wt activinbA AMH GDF-9 KitL
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Foxl2
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S Pangas Hum Reprod Update online 2005
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3 ème mécanisme des IOPs
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Accélération de l’apoptose
Galactosémie Anomalies du chromosome X Gènes de l’apoptose
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Galactosémie Galactose-1-phosphate uridyltransferase (GALT)
Anomalies oculaires, rénales, hépatiques Risque d’IOP = 60% à 30 ans J Pediatr 2000; 137: 833
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Accélération de l’apoptose
Galactosémie Anomalies du chromosome X Gènes de l’apoptose
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Histoire d ’une vie ... (b) (d) (c) (a) Ullrich O. Z Kinderhkl 1930 :
Première publication du cas d’une fillette de 8 ans atteinte du syndrome d ’Ullrich-Turner (b) Diplôme de fin d ’Études Secondaires à 19 ans (d) 60 ans, hypoacousie, pas de THS, ostéoporose modérée, HVG, HTA, TSH= 9.2mU/l Caryotype…XO (c) Études supérieures de chimie Travaille comme chimiste, Pas de développement pubertaire, otites à répétition, Wiedemann HR et al. Am Med Genet 1991
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Monosomie X : phénotype le plus sévère
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Syndrome de Turner : phénotype
Aspect du visage : visage triangulaire FP obliques en bas et en dehors Implantation basse des cheveux Thorax déformé Ecartement exagéré des mammelons Pterygium colli Malformations (1/3 des cas) í coarctation de l ’ aorte Seins peu développés Malformations du squelette anomalies du poignet anomalies de la main anomalies du genou Main Naevi Dysgénésie ovarienne (atrophie des gonades tissu fibreux st é rilit habituelle ) Utérus hypoplasique Pilosité très réduite • Petite taille ++ ( 1,42 m) Malformations rénales (1/2 des cas) Anomalies ORL (troubles de l’audition) Développement intellectuel dans les limites de la normale
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Turner 50% monosomie X (45X)
5-10% duplication du bras long de l’X= Isochromosome (46 X,i,q (Xq)) 10% délétion partielle du chromosome X 30% mosaïques 45 X/46XX ou 45X/46XY de degré variable
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Turner Puberté spontanée : 5-30% des cas Fertilité de 5 à 10%
++ en présence de mosaïque En cas de monosomie : 8-10% puberté normale Grossesse exceptionnelle
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Turner
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56 enfants et adolescentes : 8-> 19,8 ans
26% des patientes : présence de follicules
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Infertilité et syndrome de Turner
Dans le syndrome de Turner : Anomalies d’appariement en méiose Atrésie des cellules germinales Haploinsuffisance des gènes qui échappent à l’inactivation car Nécessité de 2 chromosomes X fonctionnels Nécessité de gènes du chromosome X en double dose pour une fonction ovarienne normale
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Translocations X;autosomes
Anomalies de structure du chromosome X Délétions Translocations X;autosomes => Régions critiques pour l’Insuffisance Ovarienne Prématurée
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Etude des délétions et des translocations
IOP et chromosome X Etude des délétions et des translocations => Région POF1 en Xq26.2-q28 => Région POF2 en Xq13.3-q22 Fassnacht et al, Cur Med Chem, 2006
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Microdélétions du chromosome X et IOP ? NON
Portnoï et al, Hum Reprod, 2006
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A D B C Whole X painting Whole X painting (green) chromosome 1 (red)
(X;1) translocation MF Portnoï et al Hum Reprod 2006
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Translocations associées à IOP : POF1 et POF2
mais délétions interstitielles associées à IOP, surtout POF2 46,X,t(X;1)(q13.3;q32) 46,X,del(X)(q21.2) 46,X,t(X;9)(q21.31;q21.2) 46,X,del(X)(q21.32) 46,X,del(X)(q22.3) Xq Aménorrhée primaire Aménorrhée à l’âge de 25 ans
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Rizzolio et al Hum Reprod 2006
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et mécanismes moléculaires dans l’ IOP
Chromosome X et mécanismes moléculaires dans l’ IOP Majorité des points de cassure au niveau du chromosome X dans l’IOP concerne des régions sans gènes (Xq21) suggère des mécanismes différents de l’atteinte directe d’un gène effet de position sur les gènes autosomiques transloqués sur le chromosome X
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IOP et gènes candidats sur le chromosome X
Fassnacht et al, Cur Med Chem, 2006
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FMR1 Xq27.3 Syndrome de l’X fragile Répétitions d’un trinucléotide CGG en 5’ du gène < 50 normal 50 – 199 prémutation > 200 mutation complète
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FMR1 inactivated gene Mutation (>200) Abnormal méthylation and FMR1 gene inactivation FMR1 gene CGG triplets Normal<40 Intermediate- 41-59 triplets Premutation: triplets
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Augmentation des transcripts du gène Affinité augmentée des protéines
Gène FMR1 20% des femmes avec une prémutation ont une IOP Sherman Am J Med Genet 2000; 97: 189 Une prémutation est présente chez 3% des cas sporadiques d’IOP Une prémutation est présente chez 13% des cas familiaux d’IOP Conway G Hum Reprod 1998; 13: 1184 Sullivan AK Hum Reprod 2005; 20: 402 Augmentation des transcripts du gène Affinité augmentée des protéines Allen Hum Genet 2004; 114: 439
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Gène FMR1 Augmentation des transcripts du gène Affinité augmentée des protéines Allen Hum Genet 2004; 114: 439
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Hagerman Am J Hum Genet 2004; 74: 805
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Quels sont les gènes impliqués dans l’apoptose ovarienne ?
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Caspases bax Récepteur TNFa / FAS mitochondrie Bcl2 Ca2++ APOPTOSE
endonucléases PARP noyau
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sauvages 100 Bax -/- 20 mois 15000 nombre de follicules J42 30 000
Nature genet 1999, 21: 200 primordiaux primaires
99
Bax / bcl2 Invalidation du gène bax
Augmentation du nombre de follicules primordiaux Diminution de l ’apoptose des cellules de la granulosa Science 1995; 270: 96 Invalidation du gène bcl2 Diminution du nombre de follicules primordiaux Endocrinology 1995;136:3665
100
Bax / bcl2 Expression ciblée de bcl2 dans les ovocytes de souris :
Inhibe l’atrésie folliculaire Prévient l’apoptose in vitro, induite par la chimiothérapie Mol Endocrinol 1999; 13: 841
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Accélération de l’apoptose
Phénomène impliqué dans la toxicité De la chimiothérapie De la radiothérapie Nature Medicine 2000; 6: 1109
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GENES IMPLIQUES DANS L ’INSUFFISANCE OVARIENNE CHEZ LA SOURIS
R LH, R progestérone FSH b, R FSH Cycline D2 , IGF R ER a , Follistatine Connexine 37 Bax, Bcl2 GDF-9 , GDF9B Foxl2 Atm, c-kit, Wnt Dazl1
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(RLH) (FSH b) RFSH FMR1,FMR2 XPNPEP2 Galt1 AIRE Diaph2 BMP15 FOXL2
GENES IMPLIQUES DANS L ’INSUFFISANCE OVARIENNE PREMATUREE CHEZ LA FEMME (RLH) (FSH b) RFSH FMR1,FMR2 XPNPEP2 Galt1 AIRE Diaph2 BMP15 FOXL2 ATM, WnT4
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Stratégies de découverte des gènes
Gènes candidats : Modèles animaux souris, brebis, drosophile Analyse des points de cassure de translocations Analyse par liaison génétique
113
Families IOP - France Famille FR1DA Famille FR2BO * ADN disponible *
3 4 6 7 8 9 11 12 13 14 5 10 1 2 * 1 2 3 4 5 6 Cas IOP * ADN disponible
114
Genome scanning (Génopôle)
457 microsatellite markers every 10 cM 441 on autosomes markers on X chromosome
115
CONCLUSION 1
116
Autosomes FSHR FOXL2 GDF9 ATM AIRE NOBOX GALT EIF2B NSB1 DMC1 Parathyroid responsive B1 gene FIGLA Progesterone receptor membrane component-1 SF1 ADAMTS 19? Chromosome X triple X Monosomie X Mosaïque X/XX Délétions X Translocations X FMR1 BMP15
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LES GENES DE LA MENOPAUSE
Nouvelles cibles contraceptives Nouveaux traitements d ’infertilité
118
DEVANT UNE IOP Taille ? Autoimmunité ? Yeux ? Galactosémie ? Caryotype
TSHus Prélèvement d’ADN TT hormonal substitutif Don d’ovocyte
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ROLE de l’ ENVIRONNEMENT??
120
Mais… Nature 2004
121
? + ??? CIRCULATION OVAIRE PERIPHERIQUE (tissu cible) MOELLE (niche) ?
Cellules Progénitrices (CPG) Cellules différenciées (ovocytes) Cellules souches Germinales (CSG) J Johnson Cell Cycle Nov 2005
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