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Purification Purification de la GFP dun lysat dE Coli par chromatographie sur colonne.

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Présentation au sujet: "Purification Purification de la GFP dun lysat dE Coli par chromatographie sur colonne."— Transcription de la présentation:

1 Purification Purification de la GFP dun lysat dE Coli par chromatographie sur colonne

2 Note de sécurité Lorsquune personne travaille avec la lampe UV, elle doit systématiquement porter une protection oculaire!

3 1. Préparation de la colonne de chromatographie Tâche 1 : Placer votre tube de lysat dE Coli sous la lampe UV. Noter vos observations

4 1.1 Centrifuger le tube de lysat bactérien 10 minutes à rpm (rotations par minute) Tampon TEsurnageant 1. Préparation de la colonne de chromatographie

5 1.2 Agiter la colonne de chromatographie fermée (30sec) pour remettre le gel en suspension. 1.3Attendre 2 minutes que le gel resédimente 1.4Ouvrir la colonne de chromatographie dabord en haut puis ensuite en bas. 1. Préparation de la colonne de chromatographie

6 1.5Laisser le liquide sécouler complètement de la colonne. 1.6 Déposer 2 mL de tampon déquilibration (EB) en le laissant sécouler le long des parois de la colonne. 1.7Laisser le tampon déquilibration sécouler jusquà la marque « 1mL » de la colonne. 1.8Fermer la colonne en haut et en bas. 1. Préparation de la colonne de chromatographie

7 1.9 Sortir votre tube de la centrifugeuse. Tâche 2 : Placer votre tube contenant le lysat dE Coli qui a été centrifuge sous la lampe UV sans remettre en suspension le culot. Noter vos observations Pipeter 250 µl de surnageant de votre tube de lysat dE Coli centrifugé et les placer dans le tube jaune contenant 250µL de tampon de fixation (BB). 1. Préparation de la colonne de chromatographie

8 2.1 Numéroter vos tubes de récupération FT, W1, E1et E2 2.2 Ouvrir votre colonne de chromatographie et laisser le liquide sécouler jusquà ce que la colonne soit vide. 2.3Placer votre colonne sur le tube FT. Attention à ne pas agiter votre colonne pour ne pas perturber la phase stationnaire. 2. Réalisation de la chomatographie

9 2.4 Prélever 250µl de lysat bactérien dilué présent dans le tube jaune et les placer dans la colonne en les laissant sécouler le long de la paroi. 2.5Laisser le liquide sécouler jusquà ce que la colonne soit vide. Insérer la pointe de la pipette dans la partie supérieure de la colonne. 2. Réalisation de la chomatographie

10 Tâche 3 : Placer votre colonne sous la lampe UV. Noter vos observations. 2. Réalisation de la chomatographie

11 2.6 Placer la colonne de chromatographie sur le tube W Déposer 750µl de tampon de lavage (WB) le long des parois de la colonne. 2. Réalisation de la chomatographie

12 Tâche 4 : Placer votre colonne sous la lampe UV. Noter vos observations. 2. Réalisation de la chomatographie

13 2.8Placer la colonne de chromatographie sur le tube E1. 2.9Introduire à la pipette 750µl de tampon délution (EL) dans la colonne. 2. Réalisation de la chomatographie

14 2.10Placer la colonne sur le tube E2 dès que la GFP arrive dans le bas de la colonne de chromatographie 2. Réalisation de la chomatographie

15 Les tubes FT, W1, E1 et E2 seront conservés à -18 ° C jusqu'à ce qu'ils soient utilisés pour le contrôle de la pureté par électrophorèse sur gel de polyacrylamide. Stockage des fractions pour les tests de vérification de pureté

16 Le nettoyage des colonnes se fera en faisant passer à lintérieur de léthanol à 70% Le stockage se fera à température ambiante, les colonnes étant remplies déthanol à 70%. 3. Nettoyage et stockage des colonnes de chromatographie


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